4. مواد و روش ها

4.1. ماده ی گیاهی

بذور آفریقایی S. aurea مورد استفاده برای این مطالعه از یک فروشگاه تخصصی در ایتالیا تهیه شد. نهال ها در آزمایشگاه بیولوژی گیاهی و گیاه شناسی دارویی دانشگاه کالیاری (UNICA) کشت شدند. پس از 5 هفته، آنها را با توجه به نیازهای زیست محیطی گونه در گلخانه "Planta Medica" قرار دادند. سپس گیاهان پس از دو سال رشد در دوره گلدهی جمع آوری شدند. قطعات هوایی بلافاصله در یک کوره تهویه هوا (FD 115، BINDER) قرار داده شدند تا کاملاً خشک شوند (زمانی که به وزن ثابت رسیدند). یک نمونه کوپن در Herbarium Karalitanum (CAG) دانشگاه کالیاری، ایتالیا، با شماره کوپن (6/23.8/V1) سپرده شد.

گلیکوزید سیستانچ همچنین می تواند فعالیت SOD را در بافت های قلب و کبد افزایش دهد و به طور قابل توجهی محتوای لیپوفوسین و MDA را در هر بافت کاهش دهد و به طور موثر رادیکال های مختلف اکسیژن فعال (OH-، H2O2 و غیره) را از بین ببرد و از آسیب DNA ناشی از آن محافظت کند. توسط رادیکال های OH گلیکوزیدهای فنیل اتانوئید سیستانچ دارای توانایی مهار قوی رادیکال های آزاد، توانایی کاهش بالاتری نسبت به ویتامین C، بهبود فعالیت SOD در سوسپانسیون اسپرم، کاهش محتوای MDA و اثر محافظتی خاصی بر عملکرد غشای اسپرم هستند. پلی ساکاریدهای سیستانچ می توانند فعالیت SOD و GSH-Px را در گلبول های قرمز و بافت ریه موش های آزمایشگاهی مسن ناشی از D-گالاکتوز افزایش دهند و همچنین محتوای MDA و کلاژن را در ریه و پلاسما کاهش دهند و محتوای الاستین را افزایش دهند. اثر پاک کنندگی خوب بر روی DPPH، طولانی شدن زمان هیپوکسی در موش های پیر، بهبود فعالیت SOD در سرم، و به تاخیر انداختن انحطاط فیزیولوژیکی ریه در موش های آزمایشگاهی پیر. و این پتانسیل را دارد که دارویی برای پیشگیری و درمان بیماری های پیری پوست باشد. در عین حال، اکیناکوزید موجود در سیستانچ توانایی قابل توجهی در از بین بردن رادیکال های آزاد DPPH دارد و توانایی حذف گونه های فعال اکسیژن و جلوگیری از تخریب کلاژن ناشی از رادیکال های آزاد را دارد و همچنین اثر ترمیم خوبی بر آسیب آنیون رادیکال آزاد تیمین دارد.

بر روی مکمل Cistanche Tubulosa کلیک کنید

【برای اطلاعات بیشتر: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

4.2. تجزیه و تحلیل اسانس

اسانس با 3 ساعت تقطیر با آب و با استفاده از دستگاه کلونجر، طبق دستورالعمل های فارماکوپه اروپا [89] به دست آمد. تجزیه و تحلیل بعدی توسط کروماتوگرافی گازی با تشخیص یونیزاسیون شعله (GC-FID) و کروماتوگرافی گازی/طیف سنجی جرمی (GC-MS) طبق [13] انجام شد. به طور خلاصه، برای تجزیه و تحلیل GC، یک ستون مویرگی HP 5، با یک روش آزمایشی 82 دقیقه در دماهای مختلف، به ترتیب، از 60 ◦C تا 246 ◦C با سرعت 3◦C/min استفاده شد، که سپس در دمای مختلف نگهداری شد. 246 ◦C به مدت 20 دقیقه. هلیوم (خلوص بیشتر یا برابر با 99.9999 درصد) به عنوان گاز حامل با سرعت جریان 1 میلی لیتر در دقیقه استفاده شد. در مجموع 1 میکرولیتر از نمونه رقیق شده (1:1{32}} در n-هگزان، وزنی بر وزن) توسط یک نمونه‌بر خودکار با نسبت تقسیم 1:20 تزریق شد. با توجه به شرایط MS، یک خط انتقال 240 درجه سانتیگراد، منبع یونی EI 200 درجه سانتیگراد و دمای چهار قطبی 150 درجه سانتیگراد با انرژی یونیزاسیون 70 eV و 3.2 اسکن در ثانیه در m/z اسکن استفاده شد. محدوده (از 30 تا 480). نرم افزار MSD ChemStation (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, USA) برای مدیریت و بسط کروماتوگرام ها و طیف های جرمی استفاده شد. در نهایت، ترکیبات به‌دست‌آمده با مقایسه کتابخانه‌های NIST02 و Adams [37،38] شناسایی شدند. نتایج بیشتر با مقایسه شاخص نگهداری تجربی ترکیبات (RI) با فازهای نیمه قطبی که RI در ادبیات گزارش کرده است بررسی شد. RIهای تجربی با استفاده از دو مخلوط استاندارد n-آلکان به عنوان مرجع (به ترتیب C8-C20 و C21-C40) با درون یابی خطی تعیین شدند [90]. درصد اجزای گزارش شده در نواحی پیک GC بدون اصلاح فاکتور پاسخ FID محاسبه شد.

4.3. فعالیت ضد قارچی

هفت سویه درماتوفیت برای فعالیت ضد قارچی S. aurea EO مورد آزمایش قرار گرفتند. به ترتیب، سه سویه بالینی از جداسازی ناخن و پوست به دست آمد: Epidermophyton floccosum FF9، Trichophyton mentagrophytes FF7، و Microsporum canis FF1. در حالی که چهار سویه درماتوفیت باقی مانده متعلق به Colección Espanõla de Cultivos Tipo (CECT): T. mentagrophytes var. بین انگشتی CECT 2958، T. rubrum CECT 2794، T. verrucosum CECT 2992، و M. gypseum CECT 2908. همه سویه ها در Sabouraud دکستروز آگار (SDA) یا Potato dextrose agar (PDA) کشت داده شدند.

حداقل غلظت های بازدارنده (MIC) و حداقل غلظت کشنده (MLC) EO با توجه به تغییرات پیشنهاد شده توسط پروتکل CLSI برای میکرورقیق سازی [91] انجام شد. به طور خلاصه، EO در DMSO (5-0.32 میکرولیتر بر میلی لیتر) رقیق شد و سپس به لوله های آزمایش استریل اضافه شد. تلقیح با تنظیم کدورت روی 0.5 مک فارلند تهیه شد و سپس در RPMI-1640 بدون گلوتامین و با 3-(N-morpholino) پروپان سولفونیک اسید (MOPS) pH 7 رقیق شد. {10}} به غلظت 1-2 × 104 CFU/mL، که سپس به لوله های آزمایش حاوی EO اضافه شد. سپس لوله ها به مدت 7 روز در دمای 30 درجه سانتی گراد انکوبه شدند. سپس، لوله‌ها از نظر رشد قارچ مورد بررسی قرار گرفتند و کمترین غلظت در جایی که رشدی مشاهده نشد، حداقل غلظت بازدارنده (MIC) در نظر گرفته شد. کمترین غلظتی که پس از آبکاری لوله های منفی در SDA به مدت 7 روز در دمای 30 درجه سانتی گراد مشاهده نشد، حداقل غلظت کشنده (MLC) در نظر گرفته شد. یک ترکیب ضد قارچی مرجع، فلوکونازول (Pfizer)، برای کنترل حساسیت میکروارگانیسم‌های مورد آزمایش استفاده شد. نتایج از سه آزمایش مستقل که به صورت تکراری انجام شد به دست آمد و نتایج به عنوان میانگین بیان شد. کنترل های منفی و مثبت نیز شامل محیط غیر تلقیح شده و محیط تلقیح شده با حداکثر غلظت DMSO (1 درصد) بودند.

4.4. فعالیت ضد التهابی

4.4.1. کشت سلولی

رده سلولی ماکروفاژ لوسمیک موش RAW 264.7 که متعلق به مجموعه کشت نوع آمریکایی (ATCC TIB-71) بود، همانطور که قبلاً توسط گروه ما گزارش شده بود کشت داده شد [92].

4.4.2. تولید اکسید نیتریک

تولید NO با ارزیابی غلظت نیترات ها در سوپرناتانت های کشت با استفاده از معرف گریس [93] ارزیابی شد. سلول ها (0.6 × 106 سلول/چاه) در 48-صفحه های کشت چاهک کشت داده شدند. ماکروفاژها یک شبه تثبیت شدند، سپس به مدت 1 ساعت با EO ({15}}. 0.08-1.25 میکرولیتر در میلی لیتر) رقیق شده در DMSO و متعاقباً با 50 نانوگرم در میلی لیتر LPS به مدت 24 ساعت پیش تیمار شدند. ماکروفاژهای تحریک شده با LPS و ماکروفاژهای تیمار نشده به ترتیب به عنوان کنترل مثبت و منفی استفاده شدند. واکنش گریس همانطور که قبلا در گروه ما توضیح داده شد [92] انجام شد. DMSO در بالاترین غلظت مورد استفاده (0.4 درصد) قبلاً توسط گروه ما نشان داده بود که هیچ فعالیت ضد التهابی یا سمیت سلولی ندارد (داده‌ها نشان داده نشده است).

4.4.3. بیان پروتئین های التهابی، iNOS و COX{4}} 

سلول‌های RAW 264.7 (1.2 × 106 سلول در چاهک) در 6-صفحه‌های چاهک کشت داده شدند و یک شبه تثبیت شدند. سپس، این سلول‌ها تحت 1 ساعت انکوباسیون با EO با غلظت 1.25 میکرولیتر بر میلی‌لیتر قرار گرفتند و به دنبال آن 24 ساعت فعال‌سازی LPS (50 نانوگرم در میلی‌لیتر) انجام شد. یک کنترل منفی از سلول های تیمار نشده و یک کنترل مثبت فقط از سلول های تیمار شده با LPS تشکیل شد. آماده سازی لیزات سلولی از پروتکلی پیروی می کند که قبلاً توسط Zuzarte و همکاران انجام شده بود. [92]

محتوای اکسید نیتریک سنتاز (iNOS) و سیکلواکسیژناز{{0}} (COX{1}}) القایی با آنالیز وسترن بلات همانطور که قبلاً توضیح داده شد ارزیابی شد [13]. برای جداسازی پروتئین، اجرای الکتروفورتیک با ژل های 10 درصد (v/v) SDS-polyacrylamide در ولتاژ 130 ولت به مدت 1.5 ساعت انجام شد. خطوط پروتئین در نتیجه به غشاهای پلی وینیلیدین فلوراید (که قبلا با متانول فعال شده بود) در 400 میلی آمپر به مدت 3 ساعت لکه شدند. سپس غشاها به مدت 1 ساعت در دمای اتاق با IgGهای غیر اختصاصی با 5 درصد (w/v) شیر بدون چربی در TBS-T انکوبه شدند. آنها بیشتر یک شبه در دمای 4 درجه سانتیگراد با آنتی بادی های خاص ضد iNOS (1:500؛ R & D Systems) یا anti-COX{19}} (1:5000؛ Abcam، Cambridge، UK) انکوبه شدند. . در نهایت، آنها به مدت 30 دقیقه با TBS-T (10 دقیقه، 3 بار) شسته شدند و به مدت 1 ساعت در دمای اتاق با آنتی بادی های ثانویه انکوبه شدند (1:40،{33}}؛ Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX, USA ) کونژوگه با پراکسیداز ترب کوهی. تشخیص کمپلکس های ایمنی توسط یک اسکنر نورتابی شیمیایی (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, USA) انجام شد. آنتی بادی علیه توبولین (1:20000؛ سیگما، سنت لوئیس، MO، ایالات متحده آمریکا) به عنوان کنترل بارگذاری استفاده شد. نرم افزار ImageLab نسخه 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, USA) برای تعیین کمیت پروتئین استفاده شد.

4.5. مهاجرت سلولی

رده سلولی فیبروبلاست جنینی موش NIH 3T3 (ATCC CRL{2}}) همانطور که قبلا در [6] توضیح داده شد، کشت داده شد.

4.5.2. سنجش مهاجرت سلولی

مهاجرت سلولی با استفاده از روش زخم خراش طبق گفته مارتینوتی و همکاران انجام شد. [94] با تغییرات جزئی، همانطور که قبلاً گزارش شد [13]. به طور خلاصه، فیبروبلاست‌های NIH 3T3 در 2.5 × 1{14}}5 سلول در میلی‌لیتر کاشته شدند و اجازه داده شد به تلاقی برسند. پس از آن، زخم با نوک پیپت 200 میکرولیتری ایجاد شد و سلول‌های غیرچسبنده با شستشو با PBS pH 7.4 خارج شدند. DMEM با 2 درصد FBS با یا بدون EO (1.25 µL/mL) اضافه شده است. تصاویر در 0، 12 و 18 ساعت پس از خراش با استفاده از میکروسکوپ کنتراست فاز گرفته شد و ناحیه زخم با استفاده از نرم افزار ImageJ/Fiji اندازه گیری شد. نتایج ارائه شده با استفاده از معادله زیر به دست آمده است:

4.6. زنده ماندن سلولها

اثر غلظت‌های مختلف EO بر زنده‌مانی ماکروفاژها و فیبروبلاست‌ها با استفاده از روش کاهش رزازورین، همانطور که قبلاً گزارش شد، ارزیابی شد [6].

4.7. پیری ناشی از اتوپوزید

همانطور که در جاهای دیگر [95] گزارش شده است، با برخی تغییرات، پیری با استفاده از اتوپوزید به عنوان یک القاء کننده پیری ارزیابی شد. به طور خلاصه، پس از 24 ساعت اتوپوزید، سلول‌ها به مدت 72 ساعت در حضور یا عدم حضور (CT) S. aurea EO انکوبه شدند. بتا-گالاکتوزیداز با استفاده از یک کیت تجاری موجود مطابق با پروتکل سازنده (#9860، Cell Signaling Technology Inc.، Danvers، MA، USA) ارزیابی شد. رنگ آبی مشخص نشان دهنده فعالیت بتا گالاکتوزیداز است. پس از توسعه رنگ، چاه ها برای تجزیه و تحلیل تصویر بعدی عکسبرداری شدند. از نرم افزار ImageJ برای تجزیه و تحلیل کمی با ارزیابی درصد سلول های پیر استفاده شد.

4.8. تحلیل آماری 

آزمایش ها حداقل به صورت تکراری برای سه آزمایش مستقل انجام شد. مقادیر میانگین ± SEM (خطای استاندارد میانگین) در نتایج ارائه شده است. اهمیت آماری برای سنجش ضدالتهابی، زنده ماندن سلولی و پیری با استفاده از آنالیز واریانس یک طرفه (ANOVA) و آزمون تعقیبی Dunnett با استفاده از GraphPad Prism نسخه 9.3 ارزیابی شد.{4}} (نرم افزار GraphPad، San Diego، CA) ، ایالات متحده آمریکا). در حالی که اهمیت آماری برای سنجش مهاجرت سلولی با استفاده از آنالیز واریانس دوطرفه و به دنبال آن تست‌های مقایسه چندگانه Sydák ارزیابی شد، مقادیر p < 0.05 از نظر آماری معنی‌دار پذیرفته شد.

5. نتیجه گیری ها

این کار اثرات مفیدی را که معمولاً به گونه های مریم گلی نسبت داده می شود، تقویت می کند. با تایید برخی از کاربردهای سنتی منتسب به S. aurea. علاوه بر این، یک ترکیب شیمیایی منحصر به فرد با 1،8 سینئول، -پینن، سیس-توژون، کافور، (E)-کاریوفیلن، ترانس توجون، -پینن، کامفن، و -هومولن به عنوان ترکیبات اصلی فاش شد. ما در اینجا گزارش می‌دهیم که EO اثرات ضد قارچی، ضد التهابی و ترمیم‌کننده زخم دارد، بنابراین استفاده‌های سنتی مرتبط با این گونه برای درمان عفونت‌های پوستی، بیماری‌های مرتبط با التهاب و زخم‌ها را تأیید می‌کند.

علاوه بر این، این مطالعه برای اولین بار گزارش می دهد که این گونه قادر به اعمال اثرات ضد پیری بوده و در نتیجه باعث افزایش بیشتر علاقه به این گونه شده است. بنابراین، این نتایج نقش استافیلوکوکوس اورئا را در کاهش التهاب و عفونت‌های مرتبط با پوست برجسته می‌کند و در نتیجه علاقه به محصولات آرایشی و بهداشتی را تقویت می‌کند. در حالی که این مطالعه نشان داده است که تولید متابولیت‌های با ارزش بالا با فعالیت‌های بیولوژیکی مرتبط را می‌توان از طریق کشت ارتقا داد، تجزیه و تحلیل شیمیایی دقیق گیاه کشت شده با توجه به تنوع شدید مشخصات شیمیایی در نتیجه عوامل ژنتیکی و محیطی ضروری است. (تنش، خواص خاک، فصل برداشت).

مشارکت نویسنده:LS و AM؛ اعتبارسنجی، DM، EC، MJG، MTC، و SP. تجزیه و تحلیل رسمی، JMA-S.، MJG، و AP. تحقیق، JMA-S.، AM، و AP. منابع، AM، MTC، و LS. مدیریت داده، AP; نوشتن - آماده سازی پیش نویس اصلی، EC، DM، JMA-S.، AP، و AM. نوشتن- بررسی و ویرایش، EC، DM، MTC، LS، و AM؛ تجسم، JMA-S. نظارت، LS و AM. مدیریت پروژه، LS; تأمین مالی، LS و MTC همه نویسندگان نسخه منتشر شده نسخه خطی را خوانده و با آن موافقت کرده اند.

منابع مالی: این کار توسط COMPETE 2020 — برنامه عملیاتی برای رقابت پذیری و بین المللی سازی و بودجه ملی پرتغال از طریق FCT — Fundação para a Ciência ea Tecnologia، تحت پروژه های UIDB/04539/2020، UIDP/04539/2020 و LA/LA 2020.

قدردانی: نویسندگان با سپاس از کمک ارزشمند دانیلا استندن، موسسه بین المللی مطالعات و زبان (دانشگاه ریدینگ، انگلستان، d.standen@reading.ac.uk) برای پشتیبانی فنی قدردانی می کنند.

منابع

1. کائور، ن. احمد، T. متابولیت های ثانویه زیست فعال گیاهان دارویی و معطر و خواص مبارزه با بیماری آنها. در گیاهان دارویی و معطر؛ Springer Nature: Basingstoke, UK, 2021; صص 113-142. شابک 978-3-030-58974-5.

2. پینتو، ای. پینا-واز، سی. سالگیرو، ال. گونسالوز، ام جی. کاستا دی اولیویرا، اس. کاوالیرو، سی. پالمیرا، آ. رودریگز، آ. Martinez-De-Oliveira, J. فعالیت ضد قارچی اسانس Thymus pulegioides بر روی گونه های Candida، Aspergillus و dermatophyte. جی. مد. میکروبیول. 2006، 55، 1367-1373. [CrossRef]

3. سانتوس، EL; Freitas، PR; آراجو، ACJ; آلمیدا، آر اس؛ تیتینو، اس آر. پائولو، CLR؛ سیلوا، ACA؛ سیلوا، LE; انجام آمارال، دبلیو. دشان، سی. و همکاران تقویت اثر ضد باکتریایی آنتی بیوتیک ها توسط اسانس Aloysia gratissima (Gillies & Hook.) Tronc. و ماده اصلی تشکیل دهنده آن بتاکاریوفیلن. Phytomedicine Plus 2021, 1, 100100. [CrossRef]

4. Edris، AE پتانسیل های دارویی و درمانی اسانس ها و ترکیبات فرار آنها: بررسی. فیتوتر. Res. 2007، 21، 308-323. [CrossRef]

5. قربانی، ع. اسماعیلی زاده، محمد. خواص دارویی مریم گلی و اجزای آن. جی. سنت. متمم. پزشکی 2017، 7، 433-440. [CrossRef]

6. پیراس، ع. ماچونی، آ. فالکونیری، دی. پورسدا، اس. گونسالوز، ام جی. Alves-Silva، JM; سیلوا، ا. کروز، MT; سالگیرو، ال. Maxia, A. ترکیب شیمیایی و فعالیت بیولوژیکی اسانس Teucrium sodium L. subsp. کاردیوئیدها (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) از جزیره ساردینیا (ایتالیا). نات تولید Res. 2022، 36، 5828-5835. [CrossRef]

7. ماچونی، ا. فالکونیری، دی. پورسدا، اس. پیراس، ا. گونسالوز، ام جی. Alves-Silva، JM; سالگیرو، ال. Maxia، A. فعالیت ضد قارچی و ترکیب شیمیایی اسانس از اندام هوایی دو کموتیپ جدید Teucrium capitatum L. از جزیره ساردینیا، ایتالیا. نات تولید Res. 2020، 35، 6007–6013. [CrossRef]

8. پیراس، ع. پورسدا، اس. فالکونیری، دی. ماکسیا، ا. گونسالوس، ام. کاوالیرو، سی. Gonc¸alves، MJ; Salgueiro, L. فعالیت ضد قارچی اسانس از Mentha spicata L. و Mentha pulegium L. در حال رشد وحشی در جزیره ساردینیا (ایتالیا). نات تولید Res. 2021، 35، 993-999. [CrossRef]

9. واکر، جی بی. Sytsma، KJ تکامل Staminal در جنس Salvia (Lamiaceae): شواهد فیلوژنتیک مولکولی برای منشأهای متعدد اهرم استمینال. ان ربات 2007، 100، 375-391. [CrossRef]

10. Waller, SB; کلف، مگابایت؛ سرا، EF; سیلوا، آل. دوس ریس گومز، آ. de Mello، JRB; de Faria، RO; Meireles، MCA گیاهان از خانواده Lamiaceae به عنوان منبع مولکول های ضد قارچی در پزشکی و دامپزشکی. میکروب. پاتگ 2017، 104، 232-237. [CrossRef]

11. کوکو، ای. ماچونی، دی. سانجست، ای. فالکونیری، دی. فاریس، ای. Maxia، A. Ethnopharmacobotany و تنوع گیاهان بومی مدیترانه ای در منطقه Marmilla، ساردینیا، ایتالیا. Plants 2022, 11, 3165. [CrossRef]

12. آفونسو، AF; پریرا، OR; فرناندز، Â. Calhelha، RC; سیلوا، AMS؛ فریرا، RCF; ترکیبات فیتوشیمیایی Cardoso، SM و اثرات زیست فعال عصاره های آبی مریم گلی آفریقایی، مریم گلی Officinalis "Icterina" و Salvia mexicana. Molecules 2019, 24, 4327. [CrossRef]

13. Alves-Silva, JM; کوکو، ای. پیراس، ا. گونسالوز، ام جی. سیلوا، ا. فالکونیری، دی. پورسدا، اس. کروز، MT; ماکسیا، ا. Salgueiro, L. پرده برداری از ترکیب شیمیایی و خواص بیولوژیکی Salvia cacaliifolia Benth. اسانس Plants 2023, 12, 359. [CrossRef]

14. Nkomo، MM; Katerere، DD; Vismer، HH; کروز، تی تی؛ Balyssac، SS; Malet-Martino، MM; مهار Makunga، NN Fusarium توسط جمعیت‌های وحشی گیاه دارویی Salvia africana-lutea L. مرتبط با پروفایل متابولومیک. مکمل BMC. جایگزین. پزشکی 2014، 14، 99. [CrossRef]

15. Codd, LE Flora of Southern Africa: Part. 4 Lamiaceae; موسسه تحقیقات گیاه شناسی: پرتوریا، آفریقای جنوبی، 1985; جلد 28 شابک 0621082686 .

16. ماکونگا، NP; Van Staden, J. یک سیستم کارآمد برای تولید گیاهچه های کلونال گیاه معطر مهم دارویی: مریم گلی آفریقایی-لوتئا L. Cult Cell Tissue Organ Cult. 2007، 92، 63-72. [CrossRef]

17. آستون فیلاندر، L. یک گیاه شناسی قومی در پزشکی بوته کیپ غربی. J. Ethnopharmacol. 2011، 138، 578-594. [CrossRef]

18. Watt, JM; Breyer-Brandwijk، MG گیاهان دارویی و سمی آفریقای جنوبی و شرقی: گزارشی از کاربردهای دارویی و دیگر آنها، ترکیب شیمیایی، اثرات فارماکولوژیک و سم شناسی در انسان و حیوان. E. & S. Livingstone: ادینبورگ، انگلستان، 1962.

19. گوپتا، AK; Cooper، EA به روز رسانی در درمان ضد قارچی درماتوفیتوز. Mycopathologia 2008، 166، 353-367. [CrossRef]

20. ماتیز، سی. Friedlander، SF عفونت ها و آبسه های بافت زیر جلدی. در اصول و عملکرد بیماریهای عفونی کودکان; الزویر: آمستردام، هلند، 2012; صص 454-462.e2. [CrossRef]

21. De Oliveira، CB; واسکونسلوس، سی. ساکای والنته، نیویورک؛ سوتو، MN; لوئیز، FG; بلدا جونیور، دبلیو. سوزا، ام دا جی تی د; بنارد، جی. Criado، PR گیرنده های شبه Toll (TLR) 2 و 4 بیان کراتینوسیت ها از بیماران مبتلا به درماتوفیتوز موضعی و منتشر. Rev. Inst. پزشکی تروپ سائوپائولو 2015، 57، 57–61. [CrossRef]

22. سلسترینو، GA; ریس، APC; کریادو، روابط عمومی؛ بنارد، جی. Sousa، MGT Trichophyton rubrum پاسخ های فاگوسیتیک و پیش التهابی را در مونوسیت های انسانی از طریق گیرنده Toll-like 2. Front ایجاد می کند. میکروبیول. 2019، 10، 2589. [CrossRef]

23. Sun, S.-C. مسیر غیر متعارف NF-B در ایمنی و التهاب. نات کشیش ایمونول. 2017، 17، 545-558. [CrossRef]

24. Rao، KMK مکانیسم های مولکولی تنظیم کننده بیان inos در انواع مختلف سلول. J. Toxicol. محیط زیست بخش سلامتی B 2000، 3، 27-58. [CrossRef]

25. Minghetti، L. Cyclooxygenase-2 (COX-2) در بیماری های التهابی و دژنراتیو مغز. J. نوروپاتول. انقضا نورول. 2004، 63، 901-910. [CrossRef]

26. شارما، ا. گوپتا، S. تظاهرات محافظتی از گیاهان دارویی به عنوان ضد قارچ: یک داروی احتمالی برای عفونت درماتوفیت. علوم بهداشتی Rep. 2022, 5, e775. [CrossRef]

27. گوا، اس. DiPietro, LA عوامل موثر بر بهبود زخم. جی. دنت. Res. 2010، 89، 219-229. [CrossRef]

28. زوزارته، م. گونسالوز، ام جی. کاوالیرو، سی. کانهوتو، جی. واله سیلوا، ال. سیلوا، ام جی; پینتو، ای. Salgueiro, L. ترکیب شیمیایی و فعالیت ضد قارچی اسانس های اسطوخودوس Lavandula viridis LHér. جی. مد. میکروبیول. 2011، 60، 612-618. [CrossRef]

29. مارتینز-روسی، NM; Bitencourt، TA; پرز، NTA؛ لانگ، EAS؛ گومز، EV; Quaresemin، NR; مارتینز، نماینده مجلس؛ لوپس، ال. Rossi, A. مقاومت درماتوفیت به داروهای ضد قارچی: مکانیسم ها و بروشور. جلو. میکروبیول. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

30. مراد، ع. Perfect، JR جنگ با کریپتوکوکوزیس: مروری بر زرادخانه ضد قارچی. مم Inst. اسوالدو کروز 2018، 113، 7. [CrossRef]

31. Vonkeman، HE; van de Laar، MAFJ داروهای ضد التهابی غیر استروئیدی: عوارض جانبی و پیشگیری از آنها. سمین. آرتریت روم. 2010، 39، 294-312. [CrossRef]

32. کاماتو، GPP; ون زیل، RL; Van Vuuren، SF; Figueiredo، AC; باروسو، جی جی. پدرو، ال جی؛ Viljoen، AM تغییرات فصلی در ترکیب اسانس، سمیت روغن و فعالیت بیولوژیکی عصاره های حلال سه گونه مریم گلی آفریقای جنوبی. اس افر. جی. بات. 2008، 74، 230-237. [CrossRef]

33. کاماتو، GPP; ون زیل، RL; Van Vuuren، SF; Viljoen، AM; Figueiredo، AC; باروسو، جی جی. پدرو، ال جی؛ Tilney، PM; Barroso، JG ترکیب شیمیایی، انواع تریکوم برگ و فعالیت های بیولوژیکی اسانس چهار گونه مریم گلی مرتبط بومی آفریقای جنوبی. جی اسنت. Oil Res. 2006، 18، 72-79. [CrossRef]

34. نجار، ب. مکاچی، جی. ناردی، وی. سرولی، سی. ناردونی، س. مانچینی، اف. ابانی، وی. Giannecchini، S. Pistelli، L. فرار و فعالیت ضد قارچی-ضد باکتریایی-ضد ویروسی گونه های مریم گلی آفریقای جنوبی. اسانس های کشت شده در شرایط یکنواخت. Molecules 2021, 26, 2826. [CrossRef]

35. Cowling، RM; راندل، PW; لامونت، بی بی. Arroyo، MK; آریانوتسو، م. تنوع گیاهی در مناطق مدیترانه ای-اقلیمی. Trends Ecol. تکامل. 1996، 11، 362-366. [CrossRef]

36. Médail, F. Ecosystems: Mediterranean. در دایره المعارف بوم شناسی، جلد 3; Elservier Inc.: آکسفورد، انگلستان، 2008; جلد 5، ص 2296–2308.

37. Adams, RP Identification of Essential Oil Components by Gas Chromatography/ Quadrupole Mass Spectrometry, 4th ed.; شرکت انتشاراتی Allured: Carol Stream، IL، ایالات متحده آمریکا، 2007.

38. موسسه ملی استاندارد و فناوری کتابخانه طیفی جمعی (NIST/EPA/NIH).

39. Guijarro-Muñoz، I. کامپت، ام. آلوارز-سینفوئگوس، آ. آلوارز-والینا، ال. Sanz، L. لیپوپلی ساکارید مسیر سیگنالینگ NF-kB با واسطه گیرنده Toll-like 4 (TLR4) و پاسخ پیش التهابی را در پری سیت های انسانی فعال می کند. جی. بیول. شیمی. 2014، 289، 2457-2468. [CrossRef]

40. منینگ، جی. گلدبلات، P. گیاهان منطقه فلوریستی کیپ بزرگ. 1: The Core Cape Flora; موسسه ملی تنوع زیستی آفریقای جنوبی: پرتوریا، آفریقای جنوبی، 2012; شابک 1919976744.

41. لیم آه توک، ام جی; کاماتو، GPP; کامبرینک، اس. سنداسی، م. Viljoen، AM ارزیابی شیمی‌سنجی تنوع اسانس سه گونه مریم گلی بومی آفریقای جنوبی. Phytochemistry 2020, 172, 112249. [CrossRef]

42. Fokou, JBH; Dongmo، PMJ؛ Boyom، FF; فوکو، JBH; Dongmo، PMJ؛ بویوم، FF ترکیب شیمیایی و خواص دارویی اسانس اسانس. در روغن های ضروری - روغن های طبیعت; الشیمی، ح.، ویرایش. IntechOpen: لندن، بریتانیا، 2020؛ صص 13-36. شابک 978-1-78984-641-6.

43. Figueiredo, AC; باروسو، جی جی. پدرو، ال جی؛ شفر، JJC عوامل موثر بر تولید متابولیت ثانویه در گیاهان: اجزای فرار و اسانس ها. طعم دهنده Fragr. J. 2008, 23, 213-226. [CrossRef]

44. van Vuuren، S. رامبورون، اس. کاماتو، جی. Viljoen، A. اسانس های بومی آفریقای جنوبی به عنوان ضد میکروبی بالقوه برای درمان بوی پا (برومدوز). اس افر. جی. بات. 2019، 126، 354–361. [CrossRef]

45. اسکات، جی. اسپرینگفیلد، EP; Coldrey, N. مطالعه فارماکوگنوستیک 26 گونه گیاهی آفریقای جنوبی که به عنوان داروهای سنتی استفاده می شود. فارم بیول. 2004، 42، 186-213. [CrossRef]

46. ​​Oosthuizen، CB; گاسا، ن. همیلتون، سی جی; لال، N. مهار مایکوتیول دی سولفید ردوکتاز و بیوفیلم مایکوباکتریایی توسط گیاهان منتخب آفریقای جنوبی. اس افر. جی. بات. 2019، 120، 291-297. [CrossRef]

47. آلوز، م. گونسالوز، ام جی. زوزارته، م. Alves-Silva، JM; کاوالیرو، سی. کروز، MT; Salgueiro, L. پرده برداری از پتانسیل ضد قارچی دو اسانس آویشن ایبری: اثر بر روی لوله جوانه C. albicans و بیوفیلم های انجام شده. جلو. داروسازی 2019, 10, 446. [CrossRef]

48. شوکلا، ر. سینگ، پی. پراکاش، بی. Dubey، NK ضد قارچ، مهار آفلاتوکسین، و فعالیت آنتی اکسیدانی اسانس شیرین Callistemon lanceolatus (Sm.) و جزء اصلی آن 1،8-سینئول علیه جدایه های قارچی از دانه های نخود. کنترل غذا 2012، 25، 27-33. [CrossRef]

49. یو، دی. وانگ، جی. شائو، ایکس. خو، اف. وانگ، اچ. روش های ضد قارچی روغن درخت چای و دو جزء مشخصه آن در برابر بوتریتیس سینرئا. J. Appl. میکروبیول. 2015، 119، 1253-1262. [CrossRef]

50. مورسیا، سی. ملنتی، م. ترزی، وی. فعالیت ضد قارچی در شرایط آزمایشگاهی ترپینن-4-ول، اوژنول، کارون، 1،{3}}سینئول (اکالیپتول) و تیمول در برابر پاتوژن های گیاهی مایکوتوکسیژنیک. افزودن غذا آلوده. قسمت A 2011, 29, 415-422. [CrossRef]

51. کیم، اچ.-م. کوون، اچ. کیم، ک. لی، اس.-ای. فعالیت های ضد قارچی و ضد آفلاتوکسیژنیک 1،8-سینئول و تی سینامالدئید بر روی آسپرژیلوس افلاتوس. Appl. علمی 2018، 8، 1655. [CrossRef]

52. دا سیلوا، ACR; لوپس، PM; د آزودو، MMB; کاستا، DCM; Alviano، CS; Alviano، DS فعالیت های بیولوژیکی انانتیومرهای a-pinene و -pinene. Molecules 2012, 17, 6305-6316. [CrossRef]

53. جانگ، س.-ک. لی، اس.-ای. کیم، اس.-اچ. Hong, C.-Y.; پارک، ام.-جی. چوی، آی.-جی. فعالیت ضد قارچی اسانس های شش درخت سوزنی بر علیه آسپرژیلوس فومیگاتوس. J. کره ای چوب علمی. تکنولوژی 2012، 40، 133-140. [CrossRef]

54. de Macêdo Andrade، AC; Rosalen، PL; فریرس، IA; اسکاتی، ال. اسکاتی، MT; آکینو، اس جی. د کاسترو، RD فعالیت ضد قارچی، نحوه عملکرد، پیش‌بینی اتصال و اثرات ضد بیوفیلم (بعلاوه){2}}انانتیومرهای پینن علیه گونه‌های کاندیدا. Curr. بالا. پزشکی شیمی. 2018، 18، 2481-2490. [CrossRef]

55. Shin, S. فعالیت های ضد قارچی اسانس های گلنیا لیتورالیس به تنهایی و در ترکیب با کتوکونازول. نات تولید علمی 2005، 11، 92-96.

56. ایرجی، ع. یزدان پناه، س. علیزاده، ف. میرزامحمدی، س. قاسمی، ی. پاکشیر، ک. یانگ، ی. زومرودیان، ک. غربالگری فعالیت های ضد قارچی مونوترپن ها و ایزومرهای آنها در برابر گونه های کاندیدا. J. Appl. میکروبیول. 2020، 129، 1541-1551. [CrossRef]

57. جعفر، م. میتری، اس. Na'was, T. مهار رشد باکتری های گرم منفی و تشکیل بیوفیلم توسط آلفا توجون. IOSR J. Pharm. Biol. علمی 2018، 13، 2. [CrossRef]

58. تکر، ت. سفر، او. گازدا ˘گلی، ع. یوروک، ای. وارول، جی. Albayrak، G. -thujone با القای استرس اکسیداتیو، آپوپتوز، تغییرات اپی ژنتیکی و کاهش سنتز توکسین، فعالیت ضد قارچی را علیه F. graminearum نشان می دهد. یورو جی. پاتول گیاهی. 2021، 160، 611-622. [CrossRef]

59. هو، اچ. گو، ی. کائو، ی. لیو، ن. جیا، پی. کنگ، دبلیو. فعالیت ضد قارچی کافور در برابر چهار پاتوژن گیاهی فوزاریوم. اس افر. جی. بات. 2022، 148، 437-445. [CrossRef]

60. وو، ک. لین، ی. چای، ایکس. دوان، ایکس. ژائو، ایکس. Chun, C. مکانیسم های اثر ضد باکتریایی فاز بخار اسانس از Cinnamomum camphora var. لینالوفرا فوجیتا علیه اشریشیا کلی. علوم غذایی Nutr. 2019، 7، 2546–2555. [CrossRef]

61. ماگیاتیس، ص. Skaltsounis، A.-L. چینو، آی. هاروتونیان، SA ترکیب شیمیایی و فعالیت ضد میکروبی درون آزمایشگاهی اسانس‌های سه گونه بومادران یونانی. Z. Für Nat. ج 2002، 57، 287-290. [CrossRef] [PubMed]

62. دهام، س. تابانا، ی. اقبال، م. احمد، م. عزت، م. مجید، ع. Majid, A. خواص ضد سرطانی، آنتی اکسیدانی و ضد میکروبی سسکوی ترپن-کاریوفیلن از اسانس Aquilaria crassna. Molecules 2015, 20, 11808-11829. [CrossRef]

63. پیری، FA; د کاسترو سوزا، ام سی; Vermelho, LLR; Vermelho، MLR; Perciano، PG; وارگاس، اف اس. بورخس، APB; دا ویگا-جونیور، VF; Moreira، MAS استفاده از -کاریوفیلن برای مبارزه با تشکیل پلاک دندانی باکتریایی در سگ ها. BMC Vet. Res. 2016، 12، 216. [CrossRef]

64. گورن، AC; پیوزی، اف. آکچیچک، ای. کیلیچ، تی. چاریکچی، س. موزیو ˘glu، E. Setzer، WN ترکیب اسانس بیست و دو گونه Stachys (چای کوه) و فعالیت های بیولوژیکی آنها. فیتوشیمی. Lett. 2011، 4، 448-453. [CrossRef]

65. یداو، ن. چاندرا، H. سرکوب پاسخ‌های التهابی و عفونت در ماکروفاژهای ریه توسط روغن اکالیپتوس و سازنده آن 1،8-سینئول: نقش گیرنده‌های تشخیص الگو TREM-1 و NLRP3، تنظیم‌کننده کیناز MAP MKP{5 }} و NFκB. PLoS ONE 2017, 12, e0188232. [CrossRef]

66. آبجو، AM; زاگورچف، پ. فیلیپووا، دی.م. لوکانوف، جی. اثرات 1،8-سینئول بر فعالیت ایزوفرم های سیکلواکسیژناز و سیکلواکسیژناز 1 و سیکلواکسیژناز 2. نات تولید شیمی. Res. 2017, 5, 1000253. [CrossRef]

67. باستوس، VPD; گومز، ع. لیما، FJB؛ بریتو، تی اس؛ Soares، PMG; پینیو، JPM؛ سیلوا، سی.اس. سانتوس، AA; سوزا، MHLP؛ Magalhães, PJC inhaled 1,8-سینئول پارامترهای التهابی را در مجاری هوایی خوکچه‌های هندی که با اووالبومین به چالش کشیده شده‌اند کاهش می‌دهد. پایه ای. کلین داروسازی سموم 2011، 108، 34-39. [CrossRef]

68. Juergens, LJ; راکه، ک. تولتا، آی. استوبر، م. Juergens, UR اثرات ضدالتهابی 1،8-سینئول (اکالیپتول) اثرات گلوکوکورتیکوئیدی را در شرایط آزمایشگاهی بهبود می‌بخشد: رویکرد جدیدی برای درمان اضافی برای COPD و آسم که صرفه جویی در مصرف استروئید دارد؟ Synergy 2017, 5, 1-8. [CrossRef]

69. سانتوس، FA; Rao، VSN اثرات ضد التهابی و ضد درد 1،8-سینئول یک اکسید ترپنوئید موجود در بسیاری از اسانس‌های گیاهی. فیتوتر. Res. 2000، 14، 240-244. [CrossRef]

70. محمد، ح. محمد، SAA; خان، او. پماد اکالیپتول موضعی Ali, HM باعث تسریع بهبود زخم و اعمال اثرات آنتی اکسیدانی و ضد التهابی در مدل سوختگی پوست موش ها می شود. J. Oleo Sci. 2022, 71, ess22214. [CrossRef]

71. Juergens, UR; Dethlefsen، U. استین کمپ، جی. گیلیسن، ا. رپگز، آر. Vetter، H. فعالیت ضد التهابی 1.8-سینئول (اکالیپتول) در آسم برونش: یک کارآزمایی دوسوکور کنترل شده با دارونما. تنفس پزشکی 2003، 97، 250-256. [CrossRef]

72. لیما، روابط عمومی; د ملو، تی اس; کاروالیو، KMMB؛ د اولیویرا، Í.B. آرودا، BR; د کاسترو بریتو، GA; رائو، VS; Santos، FA 1،8-سینئول (اکالیپتول) پانکراتیت حاد ناشی از سرولئین را از طریق تعدیل سیتوکین‌ها، استرس اکسیداتیو و فعالیت NF-kB در موش بهبود می‌بخشد. زندگی علمی. 2013، 92، 1195-1201. [CrossRef]

73. کوته، اچ. بوچر، M.-A.; پیچت، ا. Legault، J. فعالیت های ضد التهابی، آنتی اکسیدانی، آنتی بیوتیکی و سیتوتوکسیک Tanacetum vulgare l. اسانس و ترکیبات آن Medicines 2017, 4, 34. [CrossRef]

74. روفینو، AT; ریبیرو، ام. یهودا، اف. سالگیرو، ال. لوپس، ام سی؛ کاوالیرو، سی. مندز، AF فعالیت ضد التهابی و غضروفی (بعلاوه)- -پینن: انتخاب ساختاری و انانتیومر. جی. نات. تولید 2014، 77، 264-269. [CrossRef]

75. شپتکین، IA; کوشنارنکو، اس وی؛ اوزک، جی. Kirpotina، LN; Utegenova، GA; کوتوخوف، YA; دانیلوا، AN; اوزک، تی. باسر، KHC; Quinn, MT مهار پاسخ های نوتروفیل انسانی توسط اسانس درمنه کوتوکووی و ترکیبات آن. جی. آگریک. مواد شیمیایی مواد غذایی 2015، 63، 4999-5007. [CrossRef]

76. دوس سانتوس، ای. لیتائو، MM; آگوئرو ایتو، CN; سیلوا فیلهو، SE; آرنا، AC؛ د سوزا سیلوا کومار، اف.ام. ناکامورا کومان، RK; اولیویرا، RJ; نظری فرماجیو، ع. Leite Kassuya, CA اثرات مفاصل ضد درد و ضد التهابی اسانس و کافور جدا شده از برگ Ocimum kilimandscharicum Gürke. J. Ethnopharmacol. 2021, 269, 113697. [CrossRef]

77. آذیکاری، ع. بنداری، س. Pandey، DP ترکیبات ضد التهابی کافور و متیل سالیسیلات از گیاه درمان درد به طور سنتی مورد استفاده Equisetum arvense LJ Nepal Chem. Soc. 2019، 40، 1-4. [CrossRef]

78. سیلوا فیلهو، س. د سوزا سیلوا کومار، اف. ویرزلر، ال. انجام پینیو، آر. گرین اسپن، آر. برسانی آمادو، سی. Cuman, R. اثر کافور بر رفتار لکوسیت ها در شرایط in vitro و in vivo در پاسخ التهابی حاد. تروپ جی فارم. Res. 2015، 13، 2031. [CrossRef]

79. چو، جی. چانگ، اچ.-جی. لی، اس.-ک. کیم، اچ.-جی. هوانگ، J.-K. Chun، HS بهبود کولیت ناشی از سدیم سولفات دکستران در موش با تجویز خوراکی -کاریوفیلن، یک سسکوئی ترپن. زندگی علمی. 2007، 80، 932-939. [CrossRef]

80. گوشیکن، LFS; بسرا، FP; حسنی، م.ف. گونزاگا، MT; ریبیرو، معاون; د سوزا، پی اف. Campos، JCL; ماسارو، TNC؛ حسینی، کالیفرنیا؛ تاکاهیرا، RK; و همکاران بتاکاریوفیلن به عنوان یک فعالیت آنتی اکسیدانی، ضد التهابی و اپیتلیال سازی مجدد در مدل برش زخم پوست موش صحرایی. اکسید. پزشکی سلول Longev. 2022، 2022، 1–21. [CrossRef]

81. بریتو، ال.اف. اولیویرا، HBM؛ Neves Selis، N.; سوزا، CLS؛ جونیور، MNS؛ سوزا، EP; دا سیلوا، LSC; سوزا ناسیمنتو، اف. آموریم، AT; Campos، GB; و همکاران فعالیت ضد التهابی -کاریوفیلن همراه با اسید دوکوزاهگزانوئیک در مدل سپسیس ناشی از استافیلوکوکوس اورئوس در موش. J. Sci. کشاورزی مواد غذایی 2019، 99، 5870–5880. [CrossRef]

82. سوزا، LFB; اولیویرا، HBM؛ das Neves Selis، N.; Morbeck, LLB; سانتوس، تی سی؛ دا سیلوا، LSC; ویانا، JCS؛ ریس، MM; سام پاسیو، کارشناسی; Campos، GB; و همکاران -کاریوفیلن و دوکوزاهگزانوئیک اسید، جدا شده یا مرتبط، دارای اثرات بالقوه ضد درد و ضد التهابی در شرایط آزمایشگاهی و درون تنی هستند. علمی Rep. 2022, 12, 19199. [CrossRef]

83. Scandiffio، R. گدو، اف. پنبه، ای. کوئریو، جی. آنتونیوتی، اس. گالو، نماینده مجلس؛ مافی، من؛ Bovolin, P. اثرات محافظتی (e)- -کاریوفیلن (bcp) در التهاب مزمن. مواد مغذی 2020، 12، 3273. [CrossRef]

84. سالاس-اوروپزا، ج. خیمنز استرادا، م. پرز تورس، آ. کاستل رودریگز، AE; بسریل-میلان، آر. رودریگز-مونروی، مایکروسافت؛ Jarquin-Yañez، K. Canales-Martinez, MM فعالیت ترمیم زخم پینن و فلاندرن. Molecules 2021, 26, 2488. [CrossRef]

85. Rocha Caldas، GF; دا سیلوا اولیویرا، آر. Araújo، AV; لافایت، SSL؛ آلبوکرکی، جی اس. دا کاستا سیلوا-نتو، جی. کاستا سیلوا، جی اچ. فریرا، اف. دا کاستا، JGM; Wanderley، AG مکانیسم‌های محافظ معده مونوترپن 1،{4}}سینئول (اکالیپتول). PLoS ONE 2015, 10, e0134558. [CrossRef]

86. Chabane، S. بودجلال، ع. ناپولی، ای. بنخالد، ا. Ruberto, G. ترکیب فیتوشیمیایی، آنتی اکسیدان و فعالیت های ترمیم زخم Teucrium polium subsp. capitatum (L.) Briq. اسانس جی اسنت. Oil Res. 2021، 33، 143-151. [CrossRef]

87. Tran, TA; هو، ام تی; آهنگ، YW; چو، م. Cho, SK Camphor باعث ایجاد فعالیت های تکثیری و ضد پیری در فیبروبلاست های پوستی اولیه انسان می شود و از تشکیل چین و چروک ناشی از UV در پوست موش جلوگیری می کند. فیتوتر. Res. 2015، 29، 1917-1925. [CrossRef]

88. رودناک-کلادنیو، بی. کاسترو، آ. استارکل، پی. گال، ام. Crespo، R. 1،8-Cineole باعث توقف چرخه سلولی G0/G1 و پیری ناشی از استرس اکسیداتیو در سلول‌های HepG2 می‌شود و سلول‌ها را نسبت به داروهای ضد پیری حساس می‌کند. زندگی علمی. 2020, 243, 117271. [CrossRef]

89. اداره کیفیت داروها و مراقبت های بهداشتی شورای اروپا. فارماکوپه اروپایی؛ EDQM: استراسبورگ، فرانسه، 2010; شابک 978-92-871-6700-2.

90. وان دن دول، اچ. کراتز، PD تعمیم سیستم شاخص حفظ شامل کروماتوگرافی پارتیشن گاز مایع برنامه ریزی شده با دمای خطی. J. کروماتوگر. 1963، 11، 463-471. [CrossRef]

91. موسسه استانداردهای بالینی و آزمایشگاهی CLSI. روش مرجع برای تست حساسیت ضد قارچی قارچ های رشته ای رقیق سازی آبگوشت. CLSI Document M38-A2, Approved Standard, 2nd ed.; موسسه استانداردهای بالینی و آزمایشگاهی: Wayne, PA, USA, 2008; جلد 28، شابک 1-56238-668-9.

92. زوزارته، م. Alves-Silva، JM; آلوز، ام. کاوالیرو، سی. سالگیرو، ال. Cruz، MT بینش های جدید در مورد پتانسیل ضد التهابی و مشخصات ایمنی اسانس Thymus carnosus و Thymus camphoratus و ترکیبات اصلی آنها. J. Ethnopharmacol. 2018، 225، 10-17. [CrossRef]

93. گرین، ال سی; واگنر، دی. گلگوفسکی، جی. Skipper، PL; Wishnok، JS; Tannenbaum، تجزیه و تحلیل SR نیترات، نیتریت، و نیترات [15N] در مایعات بیولوژیکی. مقعدی بیوشیمی. 1982، 126، 131-138. [CrossRef]

94. مارتینوتی، اس. رانزاتو، ای. سنجش ترمیم زخم خراش. در سلول های اپیدرمی: روش ها در زیست شناسی مولکولی. ترکسن، ک.، ویرایش. Humana: نیویورک، نیویورک، ایالات متحده آمریکا، 2019؛ جلد 2109، ص 225-229. [CrossRef]

95. موریرا، ص. سوزا، اف جی. ماتوس، پی. Brites، GS; گونسالوز، ام جی. کاوالیرو، سی. فیگویرینها، آ. سالگیرو، ال. باتیستا، ام تی; برانکو، کامپیوتر; و همکاران ترکیب شیمیایی و اثر در برابر تغییرات پوستی عصاره‌های فعال زیستی به‌دست‌آمده از تقطیر با آب برگ‌های اکالیپتوس گلوبولوس. Pharmaceutics 2022, 14, 561. [CrossRef]

【برای اطلاعات بیشتر: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】