پروفایل متابولیت و فعالیت ضد پیری برنج کوجی تخمیر شده با Aspergillus Oryzae و Aspergillus Cristatus: یک مطالعه تطبیقی ​​Ⅱ

3. بحث

قسمت های مختلف برنج مانند پوسته، سبوس، جنین و آندوسپرم از سطح تا داخل دارای ترکیبات شیمیایی متفاوتی هستند (26). به طور خاص، سبوس برنج حاوی انواع مختلفی استاسیدهای فنولیکوفلاونوئیدها، که به نمایشگاه معروف هستندفعالیت آنتی اکسیدانیعلاوه بر این، دیواره سلولی برنج از یک ساختار آرابینوکسیلانی تشکیل شده است که شامل زایلوز، آرابینوز، اسید فرولیک و اسید فرولیک است (27). نفوذ دیواره سلولی برنج عموماً سخت است و کوجی برنج مزیت نفوذ آسان را ارائه می‌کند. دیواره سلولی برنج توسط آنزیم های مختلف مانند پروتئاز و گلوکوزیداز از میکروب های تلقیح شده (24. بنابراین کوئی برنج نشان می دهدسطوح بالاتری از فعالیت مهاری تیروزینازوفعالیت های آنتی اکسیدانینسبت به مواد خام خود، زیرا حاوی ترکیبات غنی شده با ارزش است (28.

برای دریافت اطلاعات بیشتر درباره فعالیت آنتی اکسیدانی سیستانچ اینجا را کلیک کنید

ما رویکرد متابولومیک را برای کوجی برنج تخمیر شده با دو قارچ رشته‌ای مختلف دنبال کردیم که تفاوت‌های قابل‌توجهی را در فعالیت آنزیم، تولید متابولیت‌ها و فعالیت‌های زیستی آشکار کرد. فعالیت آنزیم های مختلف مانند a-amylase، &glucosidase و -glucosidase تولید شده توسط A. cristatus و A. oryzae تلقیح شده با زمان تخمیر افزایش یافت (شکل 3). از آنجا که این آنزیم ها ساختار آرابینوکسیلان را تجزیه می کنند، اسیدهای فنولیک متنوعی از دیواره سلولی برنج در هر دو نمونه جدا شد، همانطور که در شکل 2 نشان داده شده است. این اسیدهای فنولیک آنتی اکسیدان های بالقوه ای هستند که استرس اکسیداتیو را کاهش می دهند. بنابراین، فعالیت های آنتی اکسیدانی و سنجش TPC با افزایش افزایش زمان تخمیر با افزایش محتوای اسید فنولیک (شکل های 2 و 4) به ویژه، RAC دارای محتوای فلاونوئیدهای بالاتری نسبت به RAO است، زیرا دارای سطح بالاتری از -گلوکوزیداز است که پیوند گلیکوزیدی را از دیواره سلولی برنج در طول مدت هیدرولیز می کند. رشد A. cristatus در کوجی برنج. گلوکوزیداز علاوه بر جدا شدن از دیواره سلولی برنج، فرم گلوکوزید فلاونوئید را به شکل آگلیکون هیدرولیز می کند که دارای فعالیت آنتی اکسیدانی بالاتری است 30]. افزایش شکل گلوکوزید فلاونوئید و شکل آگلیکون باعث افزایش فعالیت های آنتی اکسیدانی مانند ABTS، DPPH FRAP و TFC می شود که ممکن است بر فعالیت آنتی اکسیدانی RAC تأثیر بگذارد، همانطور که در نقشه شبکه همبستگی نشان داده شده است (شکل 4). این پدیده همچنین در مطالعه قبلی مشاهده شد که تبدیل زیستی ایزوفلاون‌های گلوکوزید به آگلیکون و افزایش الگوهای فعالیت آنتی‌اکسیدانی با توجه به زمان نگهداری در سویای تخمیر شده با آن را نشان داد. کریستاتوس [311.

RAO دارای سطح بالاتری از فعالیت a-glucosidase است که پیوندهای a-گلیکوزیدی را می شکند و محتوای بالاتر گلوکز را خود تولید می کند. علاوه بر این واقعیت که گلوکز منبع اصلی کربن برای قارچ است، در RAC، سطح گلوکز به دنبال تخمیر کاهش یافت زیرا برای سنتز متابولیت‌های ثانویه مانند مشتقات auroglaucin، که ترکیبات رنگدانه‌ای متمایز تولید شده توسط A. cristatus هستند و نه A استفاده می‌شود، کاهش یافت. oryzne. مطالعات قبلی گزارش کرده اند که مشتقات آئوروگلوسین در DPPH فعالیت دارند و به عنوان ترکیبات آنتی اکسیدانی بالقوه در نظر گرفته می شوند [32]. علاوه بر این، دیواره سلولی برنج فروریخته می‌تواند به آنزیم‌ها اجازه دهد تا به درونی‌ترین قسمت‌های برنج نفوذ کنند [24]. از این رو، متابولیت های بیشتری را می توان آزادانه و بدون وقفه از دیواره بیرونی برنج استخراج کرد.

در نقشه شبکه همبستگی بین فعالیت‌های زیستی و متابولیت‌های هر دو RAO و RAC (شکل 4)، تمایلات رایج این بود که فلاونوئیدها، اسیدهای آلی، مشتقات قند و اسیدهای چرب به‌عنوان مشارکت‌کنندگان بالقوه در فعالیت‌های زیستی پیشنهاد شدند. فلاونوئیدها و اسیدهای فنولیک آنتی اکسیدان های معروفی هستند و با توجه به عملکردهای مختلف مزایای زیادی دارند. به دلیل توانایی آنها در کاهش استرس اکسیداتیو، از آنها برای افزایش کیفیت غذا و بهبود پیری پوست استفاده می شود [33]. علاوه بر این، یک مطالعه قبلی گزارش داده است که اسیدهای چرب و آنتی اکسیدان ها می توانند یک اثر هم افزایی برای پیشگیری و مدیریت پیری پوست ایجاد کنند [34].

از سوی دیگر، مشتقات auroglaucin و lysophospholipid به عنوان عوامل اضافی برای متابولیت ها در RAC عمل می کنند [35]. مشتقات آئوروگلوسین، همانطور که در بالا گفته شد، دارای فعالیت آنتی اکسیدانی هستند، بنابراین، ما فرض می کنیم که آنها پتانسیل پایان دادن به واکنش های زنجیره ای رادیکال های آزاد را برای کاهش استرس های پوستی دارند. یاهاگی و همکاران نشان داد که لیزوفسفولیپیدها می توانند با افزایش بیان عوامل مرتبط با مانع پوست و عملکردهای آبرسانی در پوست، رطوبت پوست را حفظ کنند [36]. مرطوب کردن یک عامل حیاتی برای پوست سالم است زیرا خشکی باعث آسیب پوستی می شود که با زبری، پوسته پوسته شدن پوست و چین و چروک های ریز مشخص می شود [37،38]. ما تخمین می زنیم که auroglaucin و lysophospholipids اثرات ضد پیری پوست در مرحله تخمیر نهایی در RAC نسبت به RAO دارند. ژائو و همکاران نشان داد که چای آجری Fuzhuan، که حاوی قارچ غالب A. cristatus است، می تواند از طریق خاموش کردن ROS و تحریک آبشارهای سیگنالینگ Nrf2، پیری نوری را مهار کند [21]. بنابراین، ما فرض می‌کنیم که RAC پتانسیل ضد پیری بالاتری نسبت به RAO با عمل از طریق مسیرهای غیرمستقیم مانند ایجاد شرایط پوستی بهتر برای رطوبت فراوان واز بین بردن استرس رادیکال های آزاد.

به طور کلی، ما معتقدیم که اسیدهای چرب تقویت شده، اسیدهای فنولیک، فلاونوئیدها، لیزوفسفولیپیدها و هیدروکینون ها ممکن است فعالیت های آنتی اکسیدانی را افزایش دهند و بیان RNA الاستین و کلاژن را بهبود بخشند و همچنین بیان RNA MMP{0}} را سرکوب کنند، در پایان تخمیر این ترکیبات الگوهای متفاوتی از تغییر در متابولیت‌ها را با توجه به قارچ تلقیح نشان دادند و بر فعالیت‌های زیستی مختلف تأثیر گذاشتند. این مطالعه تفاوت در متابولیسم کلی بین گونه‌های مختلف از یک جنس آسپرژیلوس را با استفاده از رویکرد متابولومیک روشن کرد. علاوه بر این، فعالیت‌های آنزیمی مختلف بر تولید متابولیت‌های مختلف تأثیر گذاشت و فعالیت‌های زیستی متفاوتی را در RAO و RAC القا کرد.

4. مواد و روش ها

4.1. مواد شیمیایی و معرف ها

4.2. آماده سازی و استخراج نمونه

قالب‌های کوجی A. oryzae KCCM 11372 (مرکز فرهنگ کره‌ای میکروارگانیسم، KCCM؛ جمهوری کره) و A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF از مرکز Cosmax BTI R&I؛ Seongnam، کره) برای تخمیر برنج جداگانه و به‌صورت جداگانه استفاده شد. . هر میکروارگانیسم روی آگار عصاره مالت (عصاره مالت، 2{9}} گرم، گلوکز، 20 گرم، پپتون، 1 گرم، آگار، 20 گرم در لیتر) در دمای 28 درجه سانتیگراد نگهداری شد. فرآیند زیستی مراحل تخمیر برای تولید کوجی از لی و همکاران اقتباس شد. [11]. نمونه‌های برنج کوجی تخمیر شده با A. oryzae و A. cristatus هر 2 روز (از روز 0 تا روز 8) برداشت شدند و در شرایط انجماد عمیق (80-◦C) تا آنالیزهای بعدی نگهداری شدند. تمامی نمونه ها با دو تکرار بیولوژیکی تهیه شدند.

روش استخراج نمونه کوجی برنج از لی و همکاران اقتباس شد. با تغییرات جزئی [11]. به طور خلاصه، نمونه‌های کوجی برنج منجمد پودر شده (5 گرم) با افزودن 8{11}} درصد اتانول آبی (40 میلی‌لیتر) و هم زدن بر روی یک تکان دهنده مداری (200 دور در دقیقه به مدت 24 ساعت) در دمای اتاق استخراج شدند. پس از سانتریفیوژ نمونه‌ها با سرعت 10،{8}} دور در دقیقه به‌مدت 5 دقیقه در دمای 4 درجه سانتی‌گراد، مایع‌های رویی با فیلتر Millex GP 0.22 میکرومتری (Merck Millipore, Billerica, MA, USA) فیلتر شدند. عصاره های نمونه فیلتر شده با استفاده از تغلیظ کننده خلاء سرعت (هانیل، سئول، کره) خشک شدند و وزن خشک برای ارزیابی بازده استخراج اندازه گیری شد.

4.3. تجزیه و تحلیل GC-TOF-MS

مراحل مشتق‌سازی نمونه‌های کوجی برنج استخراج‌شده همانطور که توسط لی و همکارانش شرح داده شد. [11]. تجزیه و تحلیل GC-TOF-MS بر روی یک سیستم GC Agilent 7890 (سانتا کلارا، کالیفرنیا، ایالات متحده آمریکا) با یک Pegasus HT TOF-MS (شرکت Leco، سنت جوزف، MI، ایالات متحده آمریکا) انجام شد. گاز حامل (هلیوم) با RTx-5MS (طول 30 متر × قطر داخلی 0.25 میلی متر، J&W Scientific، Folsom، CA، USA) با سرعت جریان ثابت 1.5 میلی لیتر در دقیقه استفاده شد. دمای انژکتور و منبع یونی به ترتیب در دمای 250 و 230 درجه سانتیگراد حفظ شد. دمای فر به مدت 2 دقیقه در دمای 75 درجه سانتیگراد حفظ شد و سپس با دمای 15 درجه سانتیگراد در دقیقه به 300 درجه سانتیگراد افزایش یافت که به مدت 3 دقیقه حفظ شد. سپس، 1 میکرولیتر از نمونه با محدوده اسکن جرمی m/z 50-800 تزریق شد. تمامی آنالیزهای نمونه با سه تکرار تحلیلی انجام شد.

4.4. تجزیه و تحلیل UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS

نمونه‌های کوجی برنج استخراج‌شده برای متابولیت‌های ثانویه با استفاده از کروماتوگرافی مایع با عملکرد فوق‌العاده بالا، طیف‌سنجی جرمی پشت سر هم تله چهار قطبی مدارگرد (UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS) با استفاده از پروتکل‌های توصیف‌شده توسط Kwon و همکارانش مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. [39]. هر نمونه با استفاده از یک ستون Phenomenex KINETEX® C18 (100 میلی متر 2.1 میلی متر، اندازه ذرات 1.7 متر؛ تورنس، CA، ایالات متحده آمریکا) جدا شد. طیف جرمی و محدوده آرایه فتودیود در هر دو حالت یون مثبت و منفی به ترتیب برای m/z 1000-100 و 200-600 نانومتر تنظیم شدند.

4.5. پردازش داده ها و تجزیه و تحلیل آماری

داده های خام GC-TOF-MS و UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS به ترتیب با استفاده از نرم افزار Leco ChromaTOF و Thermo Xcalibur به فرمت netCDF (*.cdf) تبدیل شدند. فایل‌های CDF ( [11،24]. داده‌های طیف‌سنجی جرمی که نشان‌دهنده جرم پیک مناسب (m/z)، زمان‌های ماند (دقیقه)، و اطلاعات ناحیه پیک به‌عنوان متغیر هستند، با استفاده از نرم‌افزار SIMCA-P plus 12.{13}} (Umetrics, Umea, سوئد) برای تجزیه و تحلیل آماری چند متغیره. قبل از تجزیه و تحلیل مؤلفه های اصلی (PCA)، تجزیه و تحلیل تفکیک حداقل مربعات جزئی (PLS-DA) و تحلیل متعامد حداقل مربعات متمایز (OPLS-DA)، مجموعه داده ها تغییر شکل داده شدند و واریانس واحد برای مقایسه کوجی برنج مقیاس بندی شد. تخمیر شده با قارچ های مختلف PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) برای آزمایش تفاوت‌های معنی‌دار (p-value < 0.05) با تحلیل واریانس یک‌طرفه و برای محاسبه مقادیر ضریب همبستگی استفاده شد. برای نقشه همبستگی نقشه شبکه همبستگی بین متابولیت هایی که دارای ضریب همبستگی پیرسون بالاتر از 0.5 هستند و فعالیت های زیستی با نرم افزار Cytoscape (https://www.cytoscape.org/ (دسترسی در 13 ژوئیه 2021) ساخته شده است. شناسایی متابولیت‌های آزمایشی با تطبیق وزن‌های مولکولی و ترکیب مولکولی، زمان ماند، قطعه جرمی انجام شد.

الگوها و جذب داده های فرابنفش (UV) از ادبیات و کتابخانه داخلی ما

4.6. تعیین فعالیت های آنزیمی

سنجش فعالیت آنزیمی برای آمیلاز، گلوکوزیداز و گلوکوزیداز طبق مطالعات قبلی انجام شد [25،40،41]. مقدار 10 گرم از هر نمونه کوجی برنج در 90 میلی لیتر آب با تکان دادن بر روی یک شیکر مداری در ساعت 120 بعد از ظهر و دمای 25 درجه سانتیگراد به مدت 1 ساعت استخراج شد. پس از فیلتر کردن نمونه ها، از مایع رویی برای ارزیابی فعالیت آنزیم ها استفاده شد.

4.7. تعیین فعالیت های آنتی اکسیدانی و محتویات کل فنول و فلاونوئید

برای تعیین فعالیت آنتی اکسیدانی نمونه‌های کوجی برنج، سنجش‌های ABTS، DPPH، قدرت آنتی‌اکسیدانی کاهش‌دهنده آهن (FRAP)، محتویات فنلی کل (TPC) و محتوای فلاونوئید کل (TFC) در سه تکرار انجام شد.

سنجش‌های ABTS و FRAP با استفاده از روشی که توسط لی و همکارانش شرح داده شد، انجام شد. [24]. به طور خلاصه، محلول استوک ABTS رقیق شده با آب مقطر برای رسیدن به جذب نهایی 0.7 ± 0.02 در 750 نانومتر (180 میکرولیتر) به هر عصاره نمونه (20 میکرولیتر) در یک صفحه چاه 96- اضافه شد. این واکنش به مدت 6 دقیقه در تاریکی در دمای اتاق انجام شد. جذب با استفاده از اسپکتروفتومتر در طول موج 750 نانومتر اندازه گیری شد. برای سنجش FRAP، مخلوطی از بافر استات 300 میلی‌مولار (pH 3.6)، 20 میلی‌مولار کلرید آهن (III) و 10 میلی‌مولار 2،4،{18} محلول تری‌پریدیل-S-تریازین (TPTZ) در 40 میلی‌مولار HCl (10:1:1، v/v/v) تهیه شد. نمونه (10 میکرولیتر) با 300 میکرولیتر معرف FRAP مخلوط شد و به مدت 6 دقیقه در دمای اتاق انکوبه شد. جذب در طول موج 570 نانومتر اندازه گیری شد. سنجش DPPH به دنبال روش اقتباس شده از Won و همکاران انجام شد. [42]، جایی که 180 میکرولیتر از محلول ذخیره DPPH (0.2 میلی‌مولار در اتانول) با 20 میکرولیتر کوجی برنج با دو عصاره قارچی مختلف در صفحات چاهی مخلوط شد و به مدت 20 دقیقه در دمای اتاق اجازه واکنش نشان داد. در تاریکی. جذب رادیکال آزاد توسط DPPH در طول موج 515 نانومتر اندازه گیری شد. نتایج ABTS، FRAP و DPPH به عنوان غلظت معادل ظرفیت آنتی اکسیدانی Trolox (TEAC) (mM) در هر میلی گرم کوجی نشان داده می شود. منحنی‌های غلظت استاندارد از 0078/0 میلی‌مولار تا 1 میلی‌مولار TEAC متغیر بودند.

برای سنجش TFC و TPC، روشی که توسط لی و همکاران استفاده شده است. [25] دنبال شد. برای سنجش TFC، 20 میکرولیتر از هر نمونه کوجی برنج با 20 میکرولیتر از 1 N NaOH و 180 میکرولیتر از 90 درصد دی اتیلن گلیکول مخلوط شد. یک صفحه چاه 96-. پس از انکوباسیون مخلوط به مدت 60 دقیقه در دمای اتاق، جذب در 405 نانومتر اندازه‌گیری شد. TFC به عنوان غلظت معادل نارینگین (NE) (mM) در هر میلی گرم کوجی ارائه می شود. منحنی غلظت استاندارد بین 0.0027 و 0.3445 میلی مولار NE خطی بود. برای تجزیه و تحلیل سنجش TPC، 20 میکرولیتر از هر نمونه با 100 میکرولیتر معرف فولین-سیوکالتیو 0.2 N در صفحات چاهی در دمای اتاق به مدت 6 دقیقه انکوبه شد. سپس 80 میکرولیتر از محلول 7.5 درصد کربنات سدیم (Na2CO3) به مخلوط اضافه شد و به مدت 60 دقیقه در دمای اتاق اجازه واکنش داد. در نهایت، جذب در طول موج 750 نانومتر ارزیابی شد. نتایج به عنوان غلظت معادل اسید گالیک (GE) (mM) در هر میلی گرم کوجی در محدوده غلظت استاندارد 0.0230-2.9391 میلی مولار GE نشان داده شده است.

4.8. کشت های سلولی

4.9. واکنش زنجیره ای پلیمراز در زمان واقعی

برای جداسازی و تعیین کمیت RNA کل از گلوله های سلولی، از معرف تریزول استفاده شد و تجزیه و تحلیل با استفاده از اسپکتروفتومتر انجام شد. سنتز cDNA در حجم کل واکنش 20 میکرولیتر انجام شد. مخلوط واکنش شامل 2 میکروگرم RNA کل، اولیگو (dT) و پیش مخلوط رونویسی معکوس تحت شرایط واکنش زیر بود: 45 درجه سانتیگراد برای 45 دقیقه، و سپس 95 درجه سانتیگراد برای 5 دقیقه. RT-PCR برای تعیین کمیت بیان ژن استفاده شد و نتایج متعاقبا با استفاده از نرم افزار سیستم StepOne PlusTM (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) آنالیز شد. تقویت‌های RT-PCR با استفاده از SYBR Green PCR Master Mix با ROX از پیش مخلوط شده (Applied Biosystems، Foster City، CA، USA) و پرایمرها (Bioneer، Daejeon، کره) در ابزار ABI 7300 طبق پروتکل سازنده انجام شد. شرایط واکنش به شرح زیر بود: شروع در دمای 95 درجه سانتیگراد برای 10 دقیقه، و به دنبال آن شرایط چرخه 95 درجه سانتیگراد برای 15 ثانیه، 60 درجه سانتیگراد برای 30 ثانیه، و 72 درجه سانتیگراد برای 30 ثانیه برای 40 چرخه. اکتین به عنوان کنترل داخلی استفاده شد.

در نتیجه، کوجی برنج تولید متابولیت‌ها و فعالیت‌های زیستی مختلف را بر اساس گونه‌های مختلف آسپرژیلوس مورد استفاده نشان داد. سطوح بالاتر ازفلاونوئیدهاو مشتقات auroglaucin در RAC منجر به بالاترفعالیت آنتی اکسیدانینسبت به RAO علاوه بر این، اثرات هم افزایی اسید چرب وترکیبات آنتی اکسیدانییافت شده در هر دو کوجی با بیان RNA مرتبط بودعامل ضد پیری پوست. مشتقات آئوروگلوسین و لیزوفسفولیپیدهای یافت شده در RAC نیز کاندیدایی بودند که می توانستند بابیان RNA عوامل ضد پیری پوست. بنابراین، حتی اگر کوجی برنج با استفاده از اعضای یک جنس (Aspergillus) تخمیر می‌شود، تفاوت‌های قابل‌توجهی در فعالیت‌های آنزیمی و متابولیت‌های گونه‌های مختلف وجود دارد و آنها بر آن تأثیر می‌گذارند.فعالیت های زیستیمانندآنتی اکسیدانوفعالیت های ضد پیری. از این رو، این مطالعه بینش جامع و همچنین منطقی برای انتخاب منطقی میکروب های تلقیح با توجه به

متابولومیک، برای بهبود کیفیت تولید تجاری کوجی.

مواد تکمیلی:موارد زیر به صورت آنلاین در شکل S1 موجود است: نمودار امتیاز PLS-DA (A,B) و نمودار امتیاز OPLS-DA (C) برای برنجکوجیتخمیر شده باآسپرژیلوس کریستاتوسیاA. oryzaeاز UHPLC-LTQ-Orbitrap MS/MS (A,C) و GC-TOF-MS (B) به دست آمدند، جدول S1: فهرست متابولیت های به طور قابل توجهی متمایز از برنجکوجیبا متفاوتAspergillus spp. در طی تخمیر شناسایی شده توسط UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS، جدول S2: فهرست متابولیت های به طور قابل توجهی متمایز از برنجکوجیبا متفاوتAspergillus spp. در طول تخمیر شناسایی شده توسط GC-TOF-MS، شکل S2: نقشه همبستگی زیست فعالی ها (اثر سلول های پوست و فعالیت آنتی اکسیدانی) و برنجکوجیتخمیر شده باآسپرژیلوس کریستاتوسیاA. oryzaeمتابولیت ها بر اساس ضریب همبستگی پیرسون. هر مربع مقادیر ضریب همبستگی پیرسون (r) را نشان می دهد.

مشارکت نویسنده:مفهوم سازی، CL و SL. روش، HL، SL، SK (Seoyeon Kyung) و JR. اعتبار سنجی، HL، SL و SK (Seoyeon Kyung)؛ تجزیه و تحلیل رسمی، HL و SK (Seoyeon Kyung). تحقیق، HL و SL. منابع، JR، SK (Seunghyun Kang) و MP; نوشتن - آماده سازی پیش نویس اصلی، HL; نوشتن - بررسی و ویرایش، HL و SL. تجسم، HL; نظارت، SL و CL. مدیریت پروژه، SK (Seunghyun Kang)، MP، و CL; کسب بودجه، CL همه نویسندگان مطالب منتشر شده را خوانده و با آن موافقت کرده اندنسخه نسخه خطی

منابع مالی:این کار توسط موسسه برنامه ریزی و ارزیابی فناوری در غذا، کشاورزی و جنگلداری کره (IPET) از طریق برنامه تحقیق و توسعه میکروبیوم کشاورزی (ابتکار استراتژیک برای میکروبیوم ها در کشاورزی و غذا)، با بودجه وزارت کشاورزی، غذا و روستا پشتیبانی شد. امور (MAFRA) (شماره گرنت 918011-04-3-HD020). علاوه بر این، این کار توسط موسسه برنامه ریزی و ارزیابی فناوری در غذا، کشاورزی، جنگلداری کره (IPET) از طریق برنامه توسعه فناوری غذایی با ارزش افزوده بالا، با بودجه وزارت کشاورزی، غذا و امور روستایی (MAFRA) حمایت شد. (شماره کمک مالی 318027-04-3-HD030)

بیانیه در دسترس بودن داده ها:داده های ارائه شده در این مطالعه در صورت درخواست از طرف سازمان در دسترس استنویسنده متناظر

قدردانی ها:این تحقیق توسط صندوق پژوهشی دانشگاه Konkuk در2020.

منابع

1. Sanlier، N. گوکچن، بی بی. Sezgin, AC مزایای سلامتی غذاهای تخمیر شده. کریت علوم غذایی کشیش. Nutr. 2019، 59، 506–527. [CrossRef]

2. یو، ک.-و. لی، اس.-ای. چوی، H.-S.; سوه، اچ. Ra، KS; چوی، جی دبلیو. هوانگ، جی.-اچ. بهینه‌سازی برای تهیه کوجی برنج با استفاده از Aspergillus oryzae CJCM-4 جدا شده از یک meju سنتی کره‌ای. علوم غذایی بیوتکنول. 2012، 21، 129-135. [CrossRef]

3. یانگ، ی. شیا، ی. لین، ایکس. وانگ، جی. ژانگ، اچ. Xiong، Z. یو، اچ. یو، جی. Ai, L. بهبود مشخصات طعم در شراب برنج چینی با ایجاد مخمر تخمیری با تحمل برتر اتانول و فعالیت تخمیر. مواد غذایی Res. بین المللی 2018، 108، 83-92. [CrossRef] [PubMed]

4. ایچیکاوا، ای. هیراتا، اس. هاتا، ی. یازاوا، ح. تامورا، اچ. کانیوکه، ام. ایواشیتا، ک. هیراتا، دی. اثر کوجی استارتر بر متابولیت ها در نوشیدنی الکلی ژاپنی ساخته شده از برنج ساکی کوشیتانری. Biosci. بیوتکنول. بیوشیمی. 2020، 84، 1714-1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan، P. تیپایوات، پ. جی، م. Sutthanut، K. سبوس برنج سیاه چسبناک رقم محلی تایلندی: منبعی از ترکیبات کاربردی در تعدیل ایمنی، زنده ماندن سلولی و سنتز کلاژن، و ماتریکس متالوپروتئیناز-2 و{2}} مهار. J. تابع. غذاها 2014، 7، 650-661. [CrossRef]

6. کیم، ای جی; چوی، JN; کیم، جی. کیم، هی؛ پارک، اس بی؛ بله، SH; چوی، جی اچ. لیو، KH; پروفایل لی، CH متابولیت و زیست فعالی کوجی برنج تخمیر شده توسط سویه‌های آسپرژیلوس. J. Microbiol. بیوتکنول. 2012، 22، 100-106. [CrossRef] [PubMed]

7. ایمز، BN; Shigenaga، MK; هاگن، TM اکسیدان ها، آنتی اکسیدان ها و بیماری های دژنراتیو پیری. Proc. Natl. آکادمی علمی ایالات متحده آمریکا 1993، 90، 7915-7922. [CrossRef] [PubMed]

8. والکو، م. لایبفریتز، دی. مونکل، جی. کرونین، MT; مزور، م. Telser, J. رادیکال های آزاد و آنتی اکسیدان ها در عملکردهای فیزیولوژیکی طبیعی و بیماری های انسانی. بین المللی جی بیوشیم. سلول بیول. 2007، 39، 44-84. [CrossRef]

9. اوتارا، بی. سینگ، AV; زامبونی، پ. ماهاجان، RT استرس اکسیداتیو و بیماری های عصبی: مروری بر گزینه های درمانی آنتی اکسیدانی بالادست و پایین دست. کر. نوروفارماکل. 2009، 7، 65-74. [CrossRef]

10. ین، جی.-سی. چانگ، Y.-C. سو، اس.-دبلیو. فعالیت آنتی اکسیدانی و ترکیبات فعال کوجی برنج تخمیر شده با آسپرژیلوس کاندیدوس. مواد شیمیایی مواد غذایی 2003، 83، 49-54. [CrossRef]

11. لی، دی. لی، اس. سینگ، دی. جانگ، ES; شین، HW; ماه، BS; لی، CH متابولوم‌های مقایسه‌ای با زمان حل‌وفصل برای تخمیر کوجی با برنج جنین قهوه‌ای، سفید و غول‌پیکر. مواد شیمیایی مواد غذایی 2017، 231، 258-266. [CrossRef] [PubMed]

12. جرار، م. بهل، س. شاهین، ن. فاطمه، ع. نسب، ر. اثرات ضد پیری رتینول و آلفا هیدروکسی اسید بر الیاف الاستین رده های سلولی فیبروبلاست پوستی انسان با عکس سالخوردگی مصنوعی. بین المللی J. Med Health Biomed. فارم. مهندس 2015، 7، 328.

13. Bolla, SR; السبعی، ع.م. الجندان، RY; بالاکریشنا، جی پی؛ راوی، پی کی; ویرآقاوان، معاون; پیلای، AA; Gollapalli، SSR; جوزف، جی پی; Surapaneni، KM قدرت التیام زخم در شرایط آزمایشگاهی عصاره متانولی برگ Aristolochia saccata احتمالاً به واسطه اثر تحریکی آن بر بیان کلاژن{3}} است. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke، MC; Nowbary, CK; شانزر، اس. ولرت، اچ. لادمن، جی. تأثیرات داروین، ME عصاره کلم فرفری غنی از کاروتنوئید خوراکی بر شاخص کلاژن I/الاستین پوست. Nutrients 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. مجید، م. بات، بی. آناند، اس. سیواکومار، ا. پالیوال، پ. Geetha، KG مهار آسیب ROS و کلاژن ناشی از UV توسط عصاره Phyllanthus emblica در فیبروبلاست های پوستی طبیعی انسان. J. Cosmet. علمی 2011، 62، 49-56. [PubMed]

16. ماسودا، م. موراتا، ک. ناروتو، اس. اوویا، ا. عصامی، ف. ماتسودا، H. ماتریکس متالوپروتئیناز{1} فعالیت های بازدارنده عصاره دانه Morinda citrifolia و ترکیبات آن در فیبروبلاست های پوستی انسانی تحت تابش UVA. Biol. فارم. گاو نر 2012، 35، 210-215. [CrossRef] [PubMed]

17. سئو، ی.-ک. یونگ، S.-H. آهنگ، K.-Y. پارک، جی.-کی. پارک، سی.-اس. اثر ضد پیری عصاره تخمیر شده سبوس برنج بر فیبروبلاست های طبیعی پوست ناشی از اشعه ماوراء بنفش. یورو مواد غذایی Res. تکنولوژی 2010، 231، 163-169. [CrossRef]

18. گوفو، ص. Trindade، H. آنتی اکسیدان های برنج: اسیدهای فنولیک، فلاونوئیدها، آنتوسیانین ها، پروآنتوسیانیدین ها، توکوفرول ها، توکوترینول ها، -اوریزانول و اسید فیتیک. علوم غذایی Nutr. 2014، 2، 75-104. [CrossRef]

19. بچمن، ا. فیلیپس، RD; Chen, J. تغییرات در خواص فیزیکی انتخابی و فعالیت آنزیمی کوجی برنج و جو در طی تخمیر و ذخیره سازی. جی. غذا. علمی 2012، 77، M318–M322. [CrossRef]

20. کانگ، دی. سو، م. دوان، ی. Huang، Y. Eurotium cristatum، یک قارچ پروبیوتیک بالقوه از چای آجری Fuzhuan، با تعدیل میکروبیوتای روده، چاقی را در موش ها کاهش داد. عملکرد غذا 2019، 10، 5032–5045. [CrossRef]

21. ژائو، پی. عالم، مگابایت؛ لی، حفاظت SH از پیری نوری ناشی از اشعه UVB توسط عصاره آبی چای Fuzhuan-Brick از طریق MAPKs/Nrf2- با واسطه کاهش تنظیم MMP-1. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. هور، اس جی; لی، سی. کیم، YC; چوی، آی. Kim, GB اثر تخمیر بر فعالیت آنتی اکسیدانی در غذاهای گیاهی. مواد شیمیایی مواد غذایی 2014، 160، 346-356. [CrossRef] [PubMed]

23. ژو، اس.-د. خو، X. لین، Y.-F. Xia، H.-Y.; هوانگ، ال. دونگ، ام.-اس. غربالگری آنلاین و شناسایی ترکیبات مهارکننده رادیکال آزاد در گلپر داهوریکا تخمیر شده با یوروتیوم کریستاتوم با استفاده از سیستم HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS. مواد شیمیایی مواد غذایی 2019، 272، 670-678. [CrossRef] [PubMed]

24. لی، اس. لی، دی. سینگ، دی. لی، CH متابولومیک پیش پردازش بهینه دانه (آسیاب) به سمت تخمیر کوجی برنج را نشان می دهد. جی. آگریک. مواد شیمیایی مواد غذایی 2018، 66، 2694-2703. [CrossRef]

بیشتر بخواهید:

ایمیل:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950