بخش 1 عصاره وزن سیستانچ توبولوزا (Schenk) عملکرد اندام عقبی را بهبود می بخشد و بیان زنجیره سنگین IId/IIx میوزین را در موش های بی حرکت بازیگران کاهش می دهد.

برای اطلاعات بیشتر لطفا تماس بگیرید:Joanna.jia@wecistanche.com

1Division of Neuromedical Science, Institute of Natural Medicine, University of Toyama, 2630 Sugitani, Toyama 930-0194, Japan 2Department of Japanese Oriental Medicine, Graduate School of Medicine and Pharmaceutical Sciences, University of Toyama, 2630 Sugitani, Toyama {{5 }}، ژاپن

مکاتبات باید به Chihiro Tohda ارسال شود. chihiro@inm.u-toyama.ac.jp

دریافت شده در 14 ژوئن 2019; بازبینی شده در ۱۳ سپتامبر ۲۰۱۹؛ پذیرش در 17 سپتامبر 2019; منتشر شده در 22 اکتبر 2019

ویراستار آکادمیک: Wen-yi Kang

حق چاپ © 2019 Yoshiyuki Kimbara et al. این یک مقاله با دسترسی آزاد است که تحت مجوز Creative Commons Attribution توزیع شده است، که اجازه استفاده، توزیع و تکثیر نامحدود در هر رسانه را می دهد، مشروط بر اینکه اثر اصلی به درستی ذکر شده باشد.

آتروفی عضله اسکلتی در بسیاری از شرایط بالینی مشاهده می شود، اما درمان دارویی هنوز ایجاد نشده است.Cistanche tubulosa(Schenk) Wight یک داروی گیاهی است که در طب سنتی ژاپنی و چینی استفاده می شود. در مطالعه حاضر، ما اثر آن را بررسی کردیمعصاره C. tubulosa(CTE) روی عضله آتروفی شده در داخل بدن. ما همچنین بیحرکتی گچ اندام عقبی را در موشها بررسی کردیم و یک نوع جدید از قالبهای بیحرکتی اندام عقبی، متشکل از نوار اسفنج مانند و یک لوله پلاستیکی نازک ابداع کردیم. با استفاده از این روش، 3 گروه از 4 گروه موش (11 نفر برای هر گروه) در اندام های عقبی گچ گرفته شدند و CTE یا وسیله نقلیه به مدت 13 روز تجویز شدند. یک روش ساختگی در موش های گروه چهارم که وسیله نقلیه به آنها تزریق شد، انجام شد. سپس عضلات سه سر سورای (TS) برداشته شدند. برای تجزیه و تحلیل اثر سیستم گچ گیری جدید و تجویز CTE بر آتروفی عضلانی، وزن مرطوب TS و سطح مقطع میوفیبر (CSA) را ارزیابی کردیم. ما همچنین سطوح بیان MyHC IId/IIx را با وسترن بلات تعیین کردیم، زیرا افزایش آنها نشانه آتروفی عضلانی غیرقابل استفاده است که نشان دهنده تغییر نوع میوفیبر با سرعت آهسته به سریع است. علاوه بر این، ما دو تست عملکرد اندام عقبی را انجام دادیم. روش جدید بیحرکتی گچ به طور قابل توجهی وزن مرطوب TS و CSA میوفیبر را کاهش داد. این با بدتر شدن عملکرد اندام عقبی و افزایش بیان MyHC IId/IIx همراه بود. تجویز CTE وزن مرطوب TS یا CSA میوفیبر را تغییر نداد. با این حال، روند بهبود از دست دادن عملکرد اندام عقبی و سرکوب افزایش بیان MyHC IId/IIx در موش‌های بی‌حرکت شده را نشان داد. روش جدید بیحرکتی گچ اندام عقبی ما به طور موثری باعث آتروفی عضلانی شد. CTE بر توده عضلانی تأثیری نداشت، اما تغییر از نوع میوفیبر آهسته به سریع را در موش‌های بی‌حرکت شده سرکوب کرد و بدتر شدن عملکرد اندام عقبی را بهبود بخشید.

Cistanche deserticola اثرات زیادی دارد، برای اطلاعات بیشتر اینجا را کلیک کنید

1. مقدمه

شرایط پاتوفیزیولوژیک مرتبط با آتروفی عضله اسکلتی شامل سارکوپنی [1]، کاشکسی [2] و آتروفی عضله اسکلتی ناشی از گلوکوکورتیکوئید [3] است. آتروفی عضله اسکلتی نیز به دلیل عدم استفاده طولانی مدت [4] ایجاد می شود که می تواند به دلیل استراحت در بستر [5]، استفاده از گچ برای درمان شکستگی ها یا آسیب های رباط [6] یا پرواز فضایی [7] باشد. از آنجایی که بیماری‌های مختلف می‌توانند باعث این وضعیت شوند، درصد زیادی از جمعیت را تحت تأثیر قرار می‌دهد.

ورزش و درمان های تغذیه ای کافی برای درمان آتروفی عضلانی ضروری است [8]. علاوه بر این، برخی مطالعات گزارش کرده اند که اقدامات متقابل دارویی، از جمله تعدیل کننده های انتخابی گیرنده آندروژن، آنتی بادی های مونوکلونال انسانی علیه میوستاتین، و آگونیست های انتخابی گیرنده گرلین، موثر هستند [9]. با این حال، این رویکردها هنوز ایجاد نشده است.

شرایط آتروفیک عضلانی که در بالا توضیح داده شد با تغییر در پروفایل نوع میوفیبر و کاهش توده عضلانی همراه است. عدم استفاده از عضله ناشی از از دست دادن تأثیر عصبی و تخلیه مکانیکی باعث تغییر آهسته به سریع نوع میوفیبر و تغییر در نمایه ایزوفرم زنجیره سنگین میوزین (MyHC) می شود [10] که با افزایش سطوح بیان MyHC IId/IIx نشان داده می شود. [11، 12]. تغییر سریع به آهسته نوع میوفیبر در عوض توسط تجویز گلوکوکورتیکوئید، کاشکسی، سپسیس و سایر عوامل ایجاد می شود [10].

سیستانچیک داروی گیاهی است که ازCistanche deserticolaYC مادر،C. tubulosa(Schenk) Wight، یا C. salsa (CA Mey) Beck، طبق داروسازی ژاپنی [13]. در طب سنتی ژاپنی (کامپو) و چینی، از آن برای درمان «سندرم نقص کلیه» استفاده می‌شود که با ناباروری، ضعف ماهیچه‌ای سیستمیک (به ویژه در پشت و اندام تحتانی) و ضعف استخوان مشخص می‌شود [14، 15]. شناخته شده است که حاوی ترکیبات مختلفی از جمله آکتئوزید، اکیناکوزید و ایزواکتئوزید است [16]. عصاره این گیاه یا ترکیبات شیمیایی آن دارای اثرات محافظتی قلبی، کبدی و عصبی است. اثرات ضد پیری، ضد خستگی، گشادکننده عروق، و اثرات مقوایی جنسی. فعالیت آنتی اکسیدانی و ضد التهابی؛ و توانایی بهبود حافظه و یادگیری [15، 16]. با این وجود، اثربخشی این گیاه برای پیشگیری یا درمان بیماری‌های تحلیل عضلانی تأیید نشده است. بنابراین، در مطالعه حاضر، به بررسی اثرات آن پرداختیمC. tubulosaعصاره (CTE) به عنوان یک درمان برای آتروفی عضلانی.

برای این منظور، ما از بیحرکتی گچ اندام عقبی برای القای آتروفی عضلانی در موش‌ها، به ویژه بر روی مواد مورد استفاده در گچ استفاده کردیم. انواع سیستم های ریخته گری گزارش شده است، از جمله گچ ریخته گری پاریس [17]، ریخته گری فایبرگلاس [18]، لوله های میکرو سانتریفیوژ پلی پروپیلن [19]، دستگاه های کت و شلوار مانند مهار ساخته شده از مش پنبه و فولاد [20]، پیپت های پلاستیکی با پروگزیمال. بالشتک اسفنجی [21]، قالب های ساخته شده از نوار بانداژ غیر الاستیک و سیم فولادی روکش شده با وینیل [22]، درج سیم همراه با صفحات فلزی [23] و استفاده از منگنه کننده پوست جراحی [24]. یک گچ ایده آل باید حداقل تهاجمی و بدون ضربه باشد تا از تغییرات التهابی جلوگیری شود زیرا التهاب می تواند باعث آتروفی عضلانی شود [25]. علاوه بر این، آزمایش‌های عملکرد اندام عقبی با گچ باید در مراحل پایانی آزمایش امکان‌پذیر باشد. علاوه بر این، کنترل بازیگران باید بدون دانش یا مهارت خاص آسان باشد. باید سبک، ارزان، خرید آسان باشد و برای استفاده و حذف نیازی به دستگاه خاصی نداشته باشد.

مدل های حیوانی مختلفی از تحلیل عضلانی گزارش شده است. تخلیه اندام عقبی اغلب استفاده شده است [11، 12] اما مشکلات متعددی از جمله نکروز دم دارد که می تواند باعث التهاب سیستمیک شود [25]. انحراف مایعات بدن به سمت دمی که منجر به ناهنجاری در عروق خونی اندام عقبی می شود [26]. ریزگرانش فوق‌العاده در اندام عقبی، که می‌تواند به شدت بر بیان پروتئین، از جمله آنزیم‌های میتوکندریایی تأثیر بگذارد [27]. همه این عوامل می توانند بر روند تحلیل عضلانی تأثیر بگذارند. یک روش مختلف با محروم کردن عضله از ورودی های عصبی (به عنوان مثال، از طریق قطع عصب سیاتیک) آتروفی عضلانی را القا می کند [28]. از آنجایی که ماهیچه ها در معرض عوامل تغذیه ای از نورون های انتهایی هستند [29]، این روش، که منجر به یک وضعیت غیر معمول عصب کشی شده می شود، می تواند روند آتروفی عضلانی را تغییر دهد. حیواناتی که در معرض اختلالات سیستمیک هستند که آتروفی عضلانی را برمی انگیزد، مانند دیابت [30]، نارسایی کلیوی [31]، تجویز کورتیکواستروئید [32] و پیری یا پیری تسریع شده [33، 34]، می توانند به عنوان مدل های انسان استفاده شوند. بیماری ها؛ با این حال، این شرایط سیستمیک همچنین می تواند با روند آتروفی عضلانی تداخل داشته باشد.

بنابراین، ما بی‌حرکتی گچ اندام عقبی را برای القای آتروفی عضلانی انتخاب کردیم، و به دنبال ایجاد یک روش جدید برای انجام آن در موش‌ها بودیم که به وسیله آن اثرات CTE بر آتروفی عضلانی را بررسی کردیم.

سیستانچمکمل های غذایی درمان می کندکلیهمرضوافزایش می دهداستحکام - قدرت

2. مواد و روشها

2.1. مواد گیاهی و استخراج.

CTE از شرکت Alps Pharmaceutical Industry Co., Ltd. (Hida، Gifu، ژاپن) خریداری شد.

ساقه های گوشتی C. tubulosa از شینجانگ اویغور آپتونوم ریون، جمهوری خلق چین جمع آوری شد. در مجموع 193 کیلوگرم پودر مخلوط C. tubulosa در 1883 لیتر اتانول 30 درصد غوطه ور شد. مخلوط به مدت 2 ساعت در دمای 64-55 درجه رفلاکس شد. عملکرد عصاره 7.2 درصد و حاوی 3.36 درصد اکتئوزید و 12.72 درصد اکیناکوزید بود.

2.2. موش.

موش های نر بالغ ddY (12 هفته) (Japan SLC، Shizuoka، Japan) به طور جداگانه در قفس های پلاستیکی قرار گرفتند و در یک چرخه نور/تاریکی 12- ساعت در یک ویواریوم تنظیم شده با دما (۲±۲۵ درجه) نگهداری شدند. همه حیوانات به طور آزاد اجازه دسترسی به آب و غذا را داشتند (شرکت Labo MR؛ شرکت نوسان، یوکوهاما، کاناگاوا، ژاپن).

تمام آزمایش‌ها و پروتکل‌های حیوانی مطابق با دستورالعمل‌های مراقبت و استفاده از حیوانات آزمایشگاهی پردیس سوگیتانی دانشگاه تویاما انجام شد. شماره تأیید آزمایش‌های حیوانی A2016INM-3 است. تمام تلاش ها برای به حداقل رساندن تعداد حیوانات مورد استفاده انجام شد.

2.3. القای آتروفی عضلات اندام عقبی و تجویز CTE.

موش ها به 4 گروه (11 نفر در هر گروه) تقسیم شدند: در روز 2، همه موش ها بیهوش شدند و موهای آنها از ران تا مچ پا با یک کرم موبر (کرم اپیلات؛ کراسی، توکیو، ژاپن) برداشته شد. در مرحله بعد، 3 از 4 گروه بازیگران (بعلاوه) طبق روش زیر بیحرکت شدند، همانطور که در شکل 1(a)-1(g) نشان داده شده است:

مرحله 1. یک نوار آب بندی فوم لاستیکی EPDM (Cemedine Corporation، توکیو، ژاپن) را به یک نوار 12 8 25 میلی متری برش دهید (شکل 1(a)).

مرحله 2. اندام عقبی را در وضعیت پلانتار مچ پا نگه دارید و آن را به آرامی در مفصل مچ پا با یک نوار مهر و موم بپیچید (شکل 1(b)).

مرحله 3. یک کلاه عایق PVC نرم TIC{1}} (شرکت نیچیفو، اوزاکا، ژاپن) را برش دهید و نوار آب بندی را بپوشانید. از نوار دو طرفه (نوار دو طرفه برش دستی PRO SELF J-1300؛ Nitoms Inc.، توکیو، ژاپن) برای چسباندن آنها استفاده کنید (شکل 1(c)).

مرحله 4. انتهای بریده کلاهک را جمع کنید. نوار چسب ضد آب با کارایی بالا (نوار پاور؛ شرکت آساهیپن، اوزاکا، ژاپن) را به حدود تقریبی برش دهید. اندازه {2}} میلی‌متر و انتهای جمع شده را ثابت کنید (شکل 1(d)).

مرحله 5. یک قطعه کوچک (تقریباً 5 30 میلی‌متر) از نوار فویل آلومینیومی (AL-30؛ Nichiban Corporation، توکیو، ژاپن) را در قسمت جلویی انتهای بالایی درپوش قرار دهید (شکل 1) (ه)).

مرحله 6. نوار پلاستیکی (نوار عایق الکتریکی وینیل شماره 21؛ شرکت Nitto Denko، اوزاکا، ژاپن) را تقریباً برش دهید. 19 × 40 میلی متر، و درپوش را بپیچید (شکل 1 (f )).

مرحله 7. همین روش را روی اندام عقبی طرف مقابل انجام دهید (شکل 1(g)).

دوره بی حرکتی مورد استفاده در مطالعه حاضر 13 روز بود و در صورت بروز یک یا چند مورد از شرایط زیر، گچ ها جایگزین می شدند: ادم شدید پدال، نکروز اندام عقبی، زخم های شدید پوستی، شل شدن گچ به دلیل تخریب، یا دررفتگی گچ از ناحیه گچ. مچ پا در گروه باقی مانده، فقط اپیلاسیون انجام شد (روش شم)، و وسیله نقلیه (سالین فیزیولوژیک) به مدت 13 روز از روز بعد از اپیلاسیون (روز 2) تجویز شد. از بین 3 گروه گچ (بعلاوه)، 2 گروه CTE (50 و 100 میلی گرم/کیلوگرم در روز)، گروه گچ (بعلاوه)/CTE-50 و گروه گچ (بعلاوه)/CTE-100 تجویز شدند. و یک وسیله نقلیه (گروه بازیگران (به علاوه) / وسیله نقلیه)، همچنین از روز 2. CTE در سالین فیزیولوژیک حل شد و روزانه از طریق گاواژ خوراکی به مدت 13 روز تجویز شد.

2.4. ارزیابی عملکرد اندام عقبی و قدرت عضلانی اندام عقبی.

در روز 14، موش های گروه گچ (به علاوه) پس از تجویز CTE دوباره بیهوش شدند و گچ ها برداشته شدند. روز بعد (روز 15)، همه موش ها از نظر عملکرد اندام عقبی و قدرت عضلانی با استفاده از دو آزمایش زیر مورد آزمایش قرار گرفتند:

2.4.1. اندازه گیری سرعت راه رفتن

یک سکوی چوبی مربعی با عرض 15 میلی متر به صورت افقی تقریباً 50 سانتی متر از زمین نگه داشته شد. سپس موش بر روی سکو قرار گرفت و سرعت راه رفتن حیوان با عبور از سکو با ثبت دستی با استفاده از کرونومتر زمان طی مسافت 50 سانتی متری ارزیابی شد. پیش از این، هر موش با دو بار پیمایش به عنوان یک جلسه آموزشی به سکو عادت کرده بود.

2.4.2. تست خطای پا

برای ارزیابی قدرت عضلانی اندام عقبی، "تست خطای پا" را انجام دادیم که در آن هر موش دوباره روی سکو قرار گرفت و تعداد لغزش های اندام عقبی از سکو جدول بندی شد. این آزمایش یک نسخه اصلاح شده از آزمایش میله ایستا است که در آن میله های هوایی با استفاده از یک گیره G ثابت می شوند و موش ها برای عبور از آنها ساخته می شوند [35]. تست خطای پا سه بار انجام شد و میانگین تعداد پا در سه جلسه ثبت شد. بین جلسات حداقل 15 دقیقه فاصله استراحت وجود داشت.

2.5. آنالیزهای بافت شناسی و مورفومتریک عضله سه سر سوره.

پس از ارزیابی عملکرد اندام عقبی، موش‌ها عمیقاً بیهوش شدند و با پرفیوژن فیزیولوژیکی سالین کشته شدند. در مرحله بعد، عضلات سه سر سورای (TS) از هر دو طرف اندام عقبی برداشته شدند. نمونه‌های اندام عقب چپ در پارافرمالدئید 4 درصد در محلول PBS به مدت 24 ساعت تثبیت شدند، سپس به محلول ساکارز 30 درصد در PBS منتقل شدند و برای محافظت در برابر سرما و انجماد انکوبه شدند. به دنبال این، بخش‌هایی با ضخامت 12- میکرومتر در امتداد محور کوچک از ناحیه میانی شکم هر عضله با استفاده از یک کرایوستات بریده شد (Leica 3050S؛ سیستم‌های Leica، Nußloch، آلمان). هفت تا ده بخش متوالی بر روی اسلایدهای شیشه ای پوشش داده شده با نوار (MAS-GP Type A، Matsunami Glass Industry، اوزاکا، ژاپن) نصب شد، بلافاصله با استفاده از سشوار خشک شد، در دمای 30 درجه نگهداری شد و با رنگ آمیزی هماتوکسیلین-ائوزین (رنگ آمیزی HE) رنگ آمیزی شد. ، آزمایشگاه ScyTek، لوگان، یوتا، ایالات متحده). یک بخش نماینده برای هر حیوان، که در آن برش محور کوتاه هر میوفیبر به وضوح قابل مشاهده بود، انتخاب شد و سطح مقطع آن (CSA) با استفاده از Image J (موسسه ملی بهداشت، بتسدا، مریلند، ایالات متحده) اندازه‌گیری شد. .

2.6. وسترن بلاتینگ.

پروتئین کل از TS سمت راست به روش زیر استخراج شد. TS سمت راست با استفاده از قیچی خرد شد و بلافاصله در نیتروژن مایع منجمد شد، در دمای 30 درجه نگهداری شد و بعداً همگن شد تا یک لیز بافتی ایجاد شود. عضلات ذوب شده به مدت 30 دقیقه در 2 میلی لیتر M-PER محلول عصاره پروتئین پستانداران (Pierce Biotechnology, Rockford, Illinois, USA) در یخ سرد انکوبه شدند و سپس همگن شدند. سپس هموژن ها در دمای 4 درجه و 4000 گرم به مدت 10 دقیقه سانتریفیوژ شدند و مواد رویی جمع آوری شدند.

1{3}} میکروگرم از پروتئین کل در هر لیزات عضلانی بارگیری و با الکتروفورز ژل دودسیل سولفات-پلی آکریل آمید سدیم (SDS-PAGE) جدا شد و سپس به غشای نیتروسلولزی ({11}}.2 میکرومتر، #) منتقل شد. 1620112، آزمایشگاه های بیو راد، هرکول، کالیفرنیا، ایالات متحده). اتصال غیر اختصاصی با 5 درصد شیر خشک بدون چربی (خشک خشک بدون چربی، 190-12865، صنایع شیمیایی خالص Wako FUJIFILM، اوزاکا، ژاپن) در نمک تریس بافر شده با 0.05 درصد Tween 20 (TBS-T) مسدود شد. سپس غشاها یک شبه در دمای 4 درجه با یک آنتی بادی اولیه حل شده در محلول تقویت کننده واکنش ایمنی سیگنال Can Get 1 (تویوبو، اوزاکا، ژاپن) انکوبه شدند. پس از هم زدن و شستشو با TBS-T، غشاها به مدت 1 ساعت در دمای اتاق با آنتی بادی ثانویه کونژوگه ترب کوهی پراکسیداز (HRP-) رقیق شده در محلول تقویت کننده واکنش ایمنی Can Get Signal 2 (تویوبو، اوزاکا، ژاپن) انکوبه شدند. سیگنال های روی غشاها از طریق الکتروشیمیلومینسانس با استفاده از لومینول شناسایی شدند. سپس آنالیز چگالی سنجی با استفاده از نرم افزار CS Analyzer (Atto، توکیو، ژاپن) انجام شد. آنتی بادی ها به شرح زیر انتخاب و رقیق شدند: آنتی بادی مونوکلونال ضد MyHC IId/IIx موش (1: 1000، کلون A4.1025، #05-716، مرک میلیپور، برلینگتون، ماساچوست، ایالات متحده)، ضد GAPDH موش آنتی بادی مونوکلونال کنترل بارگذاری (1: 3500، G041 ABM، ونکوور، کانادا)، و آنتی بادی ثانویه پلی کلونال پلی کلونال ثانویه IgG بز کونژوگه با HRP (1: 2000، Abcam، کمبریج، انگلستان).

2.7. تحلیل های آماری

همه نتایج به صورت میانگین ± خطای استاندارد میانگین (SEM) بیان می شوند. معنی‌داری آماری مقایسه‌های بین گروه‌ها با آزمون‌های ANOVA یک‌طرفه و آزمون‌های Dunnett's Post Hoc یا آزمون HSD Tukey تأیید شد. آزمون کروسکال-والیس و آزمون‌های دانن. یا آنالیز واریانس دوطرفه با اندازه گیری های مکرر و آزمایش دانت تعقیبی. از آزمون اسمیرنوف-گراب برای حذف موارد پرت استفاده شد. برای همه ارزیابی‌های آماری، مقادیر p کمتر از 05/0 0 از نظر آماری معنی‌دار در نظر گرفته شد و تمام تحلیل‌ها با استفاده از GraphPad Prism 6 (نرم‌افزار GraphPad، La Jolla، کالیفرنیا، ایالات متحده) انجام شد.

سیستانچمکمل های غذایی ضد پیری و افزایش قدرت

3. نتایج

3.1. سلامت حیوانات و تأثیر CTE بر وزن بدن.

در ظاهر بصری، اندام‌های عقب موش‌های بی‌حرکت شده در مقایسه با موش‌های گروه بازیگران/خودرو، همه آتروفیک بودند. بیحرکتی گچ منجر به کاهش قابل توجه وزن بدن در پایان مرحله مطالعه شد. در مقابل، تغییرات وزن بدن در موش‌های گچ ()/گروه وسیله نقلیه معنی‌دار نبود. دو گروه گچ (به علاوه)/CTE هیچ تغییر قابل توجهی در وزن بدن در مقایسه با گروه گچ (بعلاوه)/خودرو (شکل 2) نشان ندادند.

عوارض شدید در اندام های عقب موش های بی حرکت، مانند نکروز پوستی یا گانگرن، مشاهده نشد و رفتار غیر طبیعی در ویواریوم مشاهده نشد. با این حال، عوارض خفیف، از جمله ادم پا، زخم‌های سطحی پوست، و ساییدگی اندام‌های عقبی، در تمام موش‌های بی‌حرکتی دیده شد (شکل 1(h)). شل شدن و دررفتگی گچ که منجر به تعویض گچ می شود نیز در بیشتر موارد مشاهده شد.

3.2. تاثیر CTE بر قدرت عضلانی و عملکرد عضلانی.

گروه گچ (بعلاوه)/خودرو تعداد لغزش های اندام عقبی را در تست خطای پا به طور قابل توجهی افزایش داد (شکل 3(a))، و سرعت راه رفتن به طور قابل توجهی کندتر از گروه بازیگران ()/خودرو بود (شکل 3(b) )).

درمان CTE منجر به تمایل وابسته به دوز به سمت کاهش لغزش اندام عقبی شد. در گروه گچ ( پلاس )/CTE-100، درمان تمایل به کاهش (p 0.0604) لغزش اندام عقبی در مقایسه با گروه گچ (به علاوه)/خودرو داشت (شکل 3(a)). در مورد سرعت راه رفتن، هر دو گروه بازیگران (بعلاوه)/CTE-50 و گروه بازیگران (به علاوه)/CTE-100 تفاوت قابل توجهی در سرعت راه رفتن در مقایسه با گروه بازیگران (به علاوه)/خودرو نشان ندادند. یک روند جزئی و غیر قابل توجه وابسته به دوز به سمت سرعت بیشتر بود (شکل 3 (ب)).

3.3. وزن مرطوب TS و Myofiber CSA.

وزن مرطوب TS با بیحرکتی گچ در مقایسه با گروه گچ () / وسیله نقلیه به طور قابل توجهی کاهش یافت (شکل 4(a)). تجویز CTE بر وزن مرطوب TS تأثیری نداشت.

میانگین CSA میوفیبر در هر گروه نیز مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. در گروه گچ (بعلاوه)/خودرو، کاهش قابل توجهی در CSA میوفیبر در مقایسه با گروه گچ ()/خودرو مشاهده شد (شکل 4(b)). همانطور که در شکل 4 (c) نشان داده شده است، Myofiber CSA بیشتر با توزیع فرکانس طبقه بندی و تجزیه و تحلیل شد. متداول ترین کلاس CSA در گروه بازیگران ( ) / خودرو بزرگتر از گروه بازیگران ( به علاوه ) / خودرو بود. درصد میوفیبرها در کلاس 1350- 2250 میکرومتر مربع CSA، در گروه بازیگران ()/خودرو به طور قابل توجهی بیشتر از گروه بازیگران (به علاوه)/خودرو بود، یا تمایل داشت که باشد، و روند مخالف در گروه بازیگران آشکار بود. گروه‌های CSA کلاس 0 900 میکرومتر مربع (شکل 4(c)). توزیع CSA تحت تأثیر تجویز CTE در دو گروه گچ (بعلاوه)/CTE، در مقایسه با گروه گچ (بعلاوه)/خودرو (شکل 4(c)) قرار نگرفت. تصاویر میوفیبر نماینده در شکل 4 (د) نشان داده شده است.

3.4. اثر CTE بر سطوح بیان MyHC IId/IIx در TS.

وسترن بلات در شش نمونه نماینده از هر گروه انجام شد (شکل 5(a)). این نمونه‌ها بر اساس اشتقاق آنها از حیواناتی انتخاب شدند که عملکرد تست خطای پا را نزدیک به میانگین برای گروه‌های مربوطه خود نشان دادند.

در گروه گچ (بعلاوه)/خودرو، MyHC IId/IIx به طور قابل توجهی در مقایسه با گروه بازیگران ()/وسیله نقلیه افزایش یافت. این افزایش وابسته به دوز توسط دولت CTE سرکوب شد. در گروه گچ ( پلاس )/CTE-100، بیان MyHC IId/IIx در مقایسه با گروه گچ (بعلاوه)/خودرو (p 0.0810) تمایل به کاهش داشت (شکل 5(b)) . بیان GAPDH که به عنوان یک کنترل داخلی مورد استفاده قرار گرفت، تفاوت قابل توجهی بین گروه ها نداشت (شکل 5(c)).

سیستانچتوبولوزا اثرات زیادی دارد