اثر ضد خستگی یک مکمل غذایی از محصولات فرعی تخمیری ضایعات آبزی تیلاپیا تایوان و مجتمع الیگوساکارید نیتیدوم مونوستروما

نویسنده:یینگ جو چن 1، چون ین کو 2، زو لینگ کنگ 3، چین یینگ لای 4، گوان ون چن 3، آن جن یانگ 1، لیانگ هونگ لین 5،6* و مینگ فو وانگ

مکمل 824 یا 1648 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن در روز از مواد آزمایشی می تواند به طور موثری کاهش دهد.غلظت نیتروژن اوره خون و غلظت لاکتات و افزایش نسبت لاکتات (p <>و محتوای گلیکوژن کبد بعد از ورزش (p < 0.05).="" based="" on="" the="" above="" results,="" the="">تمرین بدنی و مصرف مخلوط مکمل غذایی ماهی تیلاپیا تخمیر شدهمحصولات جانبی ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدها می توانند عملکرد ورزشی را بهبود بخشندموش ها و کمک به دستیابی به اثر ضد خستگی.

1. مقدمه ای بر روش ضد خستگی

مطالعات نشان داده است که خستگی به عنوان تأثیر منفی بر کار، ورزشی تعریف می شودعملکرد، زندگی خانوادگی و روابط اجتماعی به دلیل حجم کار ذهنی و جسمیخستگی. کاهش انرژی، تجمع بیش از حد متابولیت ها و استرس اکسیداتیو هستند عوامل مهمی را در ایجاد خستگی جسمانی در نظر گرفت. خستگی جسمی معمولابه عنوان کاهش برگشت پذیر عملکرد در طول ورزش تعریف می شود. خستگی شناخته شدهمکانیسم مربوط به در دسترس بودن سوخت متابولیک و تجمع زباله است. حرفه ایورزش شدید طولانی مدت باعث تولید گونه های اکسیژن فعال (ROS) می شود که ممکن استباعث آسیب بافتی و استرس اکسیداتیو می شود. در حین ورزش، بدن مقدار زیادی مصرف می کندمولکول های حامل انرژی، مانند ATP (آدنوزین تری فسفات)، فسفوکراتین،گلیکوژن عضلانی و غیره وقتی شدت و دوره تمرین افزایش می یابد، بدنمصرف اکسیژن نیز افزایش می یابد. خستگی ورزشی زمانی رخ می دهد که بدن دچار خستگی نشودمکمل های انرژی به موقع پس از ورزش طولانی یا شدید، سلول های بافتی شتاب می گیرندگلیکولیز بی هوازی به دلیل هیپوکسی شدید مقدار لاکتات تولید شده در عضلهافزایش می یابد و به آرامی تجمع می یابد و باعث افزایش غلظت یون هیدروژن در می شودبدن، کاهش متعاقب pH خون و تسریع خستگی. اکسیژنجذب و واکنش زنجیره ای انتقال الکترون در طول تمرین افزایش می یابد، مربوط به واکنشتولید گونه های اکسیژن (ROS). گونه های فعال اکسیژن به تدریج جمع می شوند و باعث می شوندآسیب ناشی از رادیکال های اکسیژن اضافی که به سلول های انسان، پروتئین، چربی و DNA آسیب می رساند. که درعلاوه بر این، ژنگ و همکاران. دریافتند که آنتی اکسیدان های اگزوژن می توانند استرس اکسیداتیو را کاهش دهندناشی از ورزش. برای افزایش عملکرد ورزشی، مکمل های غذایی باکربوهیدرات ها و اسیدهای آمینه، به ویژه اسیدهای آمینه با زنجیره شاخه ای (BCAAs)، یکعامل بحرانی. در سال های اخیر، مطالعه BCAAs به ارتقای متابولیسم سلولی کمک کرده است.در نتیجه باعث افزایش و بازیابی عملکرد ورزشی می شود.تیلاپیا یک محصول مهم آبزی پروری در چین است. تقریباً 60 تا 75 درصد اززباله های تولید شده از فرآوری نهاییمانند استخوان ماهی، پوست و سایر محصولات جانبی،وزن آن تا 4500 تن تخمین زده می شود. استخوان ماهی حدود 15 تا 20 درصد از پایان را تشکیل می دهد.آنها سرشار از پروتئین، ویتامین ها، مواد معدنی، عناصر کمیاب، DHA (دوکوزاهگزانوئیک اسید) هستند.و سایر مواد مغذی برای بهبود منافع اقتصادی کلی Wu-Guo با کیفیت بالاچینی هاکپور (تیلاپیا)، استخوان های ماهی باقی مانده و محصولات جانبی پوست حاصل از فرآوریبرش های تیلاپیا با استفاده از تکنولوژی پیشرفته استخراج و تغلیظ تصفیه شدندو یک فناوری تخمیر باکتریایی لاکتات. محصول تخمیر مخلوط شدمونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدها برای تشکیل یک ماده پیچیده جدید برای مراقبت های بهداشتی. اینمخلوطی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومالیگوساکارید استسرشار از آمینو اسیدهای شاخه دار (BCAAs)، از جمله لوسین، ایزولوسین و والین. اینمیانگین محتوای کل BCAA جزء عملکردی ترکیب محصولات فرعی تخمیر شدهضایعات آبزیان تیلاپیا چین ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید218 میلی گرم در گرم است.ورزش متوسط ​​یا تمرین بدنی برای تقویت قلبی ریوی مفید استعملکرد، بهبود عملکرد ورزشی، و کمک به جلوگیری از توسعهبیماری های مزمن. این مطالعه از مدل موش پیری تسریع شده برای بررسی این موضوع استفاده کردتاثیر تمرین بدنی همراه با مکمل های غذایی با استفاده از BCAA غنیمخلوطی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدها رویعملکرد ورزشی و خستگی

2. مواد و روش های ضد خستگی

2.1. آماده سازی مواد

2.1.1. منشاء مواد

محصولات جانبی تیلاپیا چین (Oreochromis niloticus) که شامل بقیه می شوداستخوان ماهی، گوشت باقیمانده و دم پس از برداشتن بدن، سر و اعضای داخلی بدنتهیه شده از Fortune Life Enterprise Co., Ltd. (شهر کائوسیونگ، چین).مونوسترومانیتیدوماز خانه غذاهای دریایی Penghu (Penghu، چین) خریداری شد و در آن ذخیره شد−20 ◦C برای آماده سازی

2.1.2. فرآیند استخراج داغ پودر استخوان ماهی

قاب استخوان ماهی به شکل گل آلود شلاق زده شد و آب مقطر (جامد: مایع).نسبت=1:5) اضافه شد. مخلوط به 4 جوشانده شد◦بریکس (درجات بریکس، واحد ساکارزاندازه گیری در مایع). مایع شفاف و باقی مانده استخوان فیش جدا و استخراج شد. مایع شفاف تا 8 جوشانده شد◦بریکس و برچسب مایع A. باقیمانده استخوان ماهی با 5 لیتر آب مقطر به 3-3.5 جوشانده شد.◦بریکس و سپس فیلتر شده و به عنوان مایع B برچسب گذاری شده است. مایع A و مایع B (◦Brix به 6-6.5 رسید) مخلوط و در آن ذخیره شد−20 ◦C برای انجماد و چربی زدایی. پس از انجماد و خشک کردن مخلوط (در FreeZone® 12 لیتری کنسول فریز خشک کن Labconco®کانزاس سیتی، MO، ایالات متحده)، پودر استخوان ماهی با استفاده از این روش به دست آمد.

2.1.3. تهیه آبگوشت تخمیر پودر استخوان ماهی

روش تخمیر پودر استخوان ماهی با باکتری لاکتات اشاره شده است واصلاح شده توسط چن و همکاران.. براث استخوان ماهی با 1 درصد لاکتیک تکمیل شدباکتری (انتروکوکوس فکالیس، BCRC14046 ولاکتوباسیلوس رامنوسوس، BCRC10940 بعد ازفعال سازی ثانویه و کشت به OD600 {0}}.8–1.0) و در 37 تخمیر شد◦C به مدت 48 ساعت بعد ازتخمیر کامل شد، آبگوشت پودر استخوان ماهی در اتوکلاو قرار گرفت (Tomyسیکو، توکیو، ژاپن) و در 121 گرم می شود◦برای خاتمه دادن به تخمیر به مدت 15 دقیقه C. بعد ازمایع تخمیر تا دمای اتاق خنک شد، در 14 سانتریفیوژ شد،{1}}× g به مدت 30 دقیقه مایع رویی با 0.45 فیلتر شدµفیلتر غشایی m (Finetech Researchو شرکت نوآوری، تایچونگ، چین) تحت یک دستگاه فیلتر مکش هوا.

2.1.4. آماده سازیمونوستروما نیتیدومهیدرولیزات پلی ساکارید

هیدرولیز پلی ساکارید از آن تهیه شدمونوستروما نیتیدومتوسط آنزیمهیدرولیز با استفاده از پروتکل ارائه شده توسط Wu و همکاران.. مایع استخراج داغ ازمونوهاtroma nitidumاستخراج شد ازمونوستروما نیتیدومبا افزودن آب مقطر تا 10 درصد(w/v) و گرمایش در 121◦C به مدت 30 دقیقه MMB (براث دریایی اصلاح شده با پودر جلبک)محیط با افزودن 1.5 درصد (w/v) مونوستروما نیتیدومو 1.5 درصد (w/v) استخراج گرمسیال ازمونوستروما نیتیدوم.تحت یک محیط آسپتیک (کابینت از نوع کف عمودیBSC{0}}، Chih Chin H&W Enterprise Co., Ltd., Taipei, China)، ما 1 درصد (w/v) فعال شده MA103 (سودوموناس تاولیMA103) و MAEF108 (Aeromonas SalmonicidaMAEF108) تا 13 میلی لیتر محیط MMB؛ به مدت 48 ساعت در ساعت 26 تکان خورد◦C برای القای آنزیمتشکیل از MA103 و MAEF108. محلول آنزیمی در 14 سانتریفیوژ شد،{3}}× g به مدت 30 دقیقه (CR-21G, Hitachi Co., Ltd., Tokyo, Japan). اندوتوکسین توسط 10 حذف شدفیلتر کیلو دالتون عصاره آنزیمی خام برای مایع شفاف شده با فیلتر کردن با a بدست آمد0.22 µغشای فیلتر متر. سپس 10 درصد (v/v) عصاره آنزیمی خام MA103 و MAEF108به سیال استخراج داغ اضافه شدندمونوستروما نیتیدوم، و مخلوط تکان داده شدو در 37 هیدرولیز شد◦C به مدت 48 ساعت سپس واکنش آنزیمی با حرارت دادن متوقف شد121 ◦C به مدت 20 دقیقه، و در نهایت، آن را به صورت یخ زده به پودر تبدیل کردند. استخوان تخمیر شده ماهیپودر ومونوستروما نیتیدومپودر هیدرولیزات پلی ساکارید به نسبت 1:2 مخلوط شدنسبت برای نمونه تجزیه و تحلیل بعدی و به تغذیه حیوانات آزمایش.

2.2. حیوانات آزمایشی و طراحی مطالعه

موش مستعد پیری{1}} (SAMP8) به عنوان مدل حیوانی برای این مورد استفاده شدمطالعه. پروتکل مطالعه مطابق با توصیه ها انجام شددر راهنمای مراقبت و استفاده از حیوانات آزمایشگاهی مؤسسه ملیسلامت و تایید شده توسط کمیته اخلاق تحقیقات حیوانات در دانشگاه پراویدنس(شماره IACUC 20161205-A02). حیوانات در یک قفس پلاستیکی شفاف قرار گرفتنداز 30 (W)× 20 (D) × 10 (H) سانتی متر3. دما و رطوبت نسبی حیواناتاق در 25 نگهداری می شد± 2 ◦ج و 65± به ترتیب 5 درصد و بدون گرد و غبار بوداتاق کنترل اتوماتیک چرخه روشنایی توسط یک تایمر خودکار کنترل می شد. در مجموع از75 موش نر چهار ماهه SAMP8 به عنوان حیوانات آزمایشی و به صورت تصادفی انتخاب شدند.به 5 گروه 15 تایی تقسیم شده است. گروه A (Gr-A) یک کنترل بدون تمرین بود.گروه B (Gr-B) یک کنترل خالی همراه با ورزش بود. گروه های C، D و E سه مورد دریافت کردنددوزهای مختلف مکمل با مخلوطی از محصولات جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس اولیگوساکارید همراه با تمرین ورزشی: 0.5 دوز—412 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن در روز (Gr-C)، 1 دوز - 824 میلی گرم / کیلوگرم وزن بدن در روز (Gr-D)، 2 دوز - 1648 میلی گرم بر کیلوگرمدوز BW/day (Gr-E). موش‌های آزمایشی برای گرفتن غذا و آب آزاد بودند. وزن بدناز موش‌ها، مقدار غذای مصرفی و حجم آب مصرفی ثبت شد. کنترلگروه ddH تغذیه شد2O (H دو تقطیر شده2O)؛ تمام گروه‌های آزمایشی دیگر موش‌ها بودندنمونه های تغذیه شده با لوله گروه‌های موش‌های تمرینی طراحی‌شده تجربی (Gr-A، Gr-B، Gr-C، Gr-D،Gr-E) آموزش دیدند و حالت تمرین شنای اجباری به صورت هفتگی برای 6 نفر انجام شدهفته ها پس از آن، آزمایش‌های زیر انجام شد: (1) قدرت گرفتن اندام جلویی, (2) تحمل وزن (5 درصد وزن بدن) تست شنای کامل، (3) بیوشیمیایی خونارزش ها و نشانگرهای زیستی مرتبط با خستگی

2.3. حالت تمرین شنا

مدل تمرینی برای تمرین شنا با مراجعه به مطالعه انجام شدتوسط الیا و همکاران. دمای استخر آب لوله کشی روی 27 تنظیم شد± 1 ◦ج و سطح آبدر عمق 40 سانتی متر تنظیم شد. حالت تمرین شنای استقامتی پیشرفته پیشرونده بودطبق پروتکل ET (تمرین ورزشی) که در مطالعه ای توسط Chen شرح داده شده استو همکاران. 2.4. تست قدرت گرفتن بالیم جلوآزمایش 30 دقیقه پس از آخرین تغذیه نمونه انجام شد. دستگیره اندام جلویی حیواندستگاه اندازه گیری قدرت (Ugo Basile Grip Strength Meter, Cat. No. 47200, Gemonio,ایتالیا) استفاده شد. حیوان آزمایش بر روی سکوی آزمایشی و دیستال قرار گرفتیک سوم دم موش گرفته شد. به موش اجازه داده شد که اندازه گیری را درک کنددستگاه، و سپس ماوس به طور موازی در جهت مخالف کشیده شد. این بود3 بار تکرار شد و حداکثر مقدار ثبت شد. وقتی دم حیوان کشیده می شود،حیوان به طور غریزی میله جلو را می گیرد تا از حرکت ناخواسته به عقب جلوگیری کندتا زمانی که اپراتور بیشتر از حداکثر چسبندگی خود را بکشد. وقتی حیوان میله را رها می کند،ابزار به طور خودکار حداکثر مقدار نیرو را ثبت می کند. 

2.5. آزمون جامع شنا

امتحان30-60 دقیقه پس از آخرین تغذیه نمونه انجام شد. موش ها بودنددر یک مخزن آب به قطر 15 سانتی متر و عمق 20 سانتی متر قرار داده و آنها را مجبور می کندشنا کنند تا زمانی که از نظر جسمی خسته شوند. حداقل 12 ساعت ناشتا بودن قبل از آن لازم بودتست کامل شنا آزمایش یک موش در یک زمان انجام شد. به منظور کوتاه کردندر زمان تست، یک سیم سربی (فیوز) به پشت ماوس برای تحمل وزن وصل شد.شنا کردن. وزن تحمل شده 5 درصد وزن بدن حیوان بود. در طول آزمون،دمای آب 27 کنترل شد± 1 ◦C و مقدار مناسب سورفکتانتاضافه شده. اندام حیوانات مورد آزمایش در طول آزمایش در حال حرکت بودند. اگر آزمونمگس حیوانی روی سطح آب شناور بود و حرکت نمی کرد، از یک نوار همزن برای هم زدن آب استفاده شد.در نزدیکی کل زمان از زمانی که موش را در آب قرار دادند تا زمانی که سر خود را نگه داشتزیر سطح آب برای حداقل 8 ثانیه به عنوان زمان شنای کامل ثبت شد.

2.6. تست های بیوشیمی

کیت های سنجش مورد استفاده برای تعیین سطح گلیکوژن کبدی (Abcam ab65620) ولاکتات (Abcam colorimetric ab65331) از شرکت بین المللی Biochiefdom خریداری شد،Ltd. (شهر جدید تایپه، چین). گلوکز، پروتئین کل، آلبومین، تری گلیسیرید، کلسترول تامآلکالین فسفاتاز (ALP)، گلوتامات اگزالواستات ترانس آمیناز (GOT)، گلوتاماتسطوح پیروات ترانس آمیناز (GPT)، نیتروژن اوره خون (BUN) و کراتین کیناز (CK)مورد آزمایش قرار گرفتند. تمام معرف های دیگر مورد استفاده در این مطالعه از درجه تحلیلی بودند.

2.7. تجزیه و تحلیل نشانگرهای زیستی مرتبط با خستگی

2.7.1. آزمایش نیتروژن اوره خون

پس از آخرین تغذیه (مدت زمان: 30 دقیقه)، موش ها در آب با دمای 30 دقیقه شنا کردند30 ◦C به مدت 90 دقیقه بدون بارگذاری وزنی و نمونه خون پس از 60 دقیقه جمع آوری شددوره استراحت. به خاطر انسانیت، با حیوانات آزمایشی بیش از حد رفتار نمی شددر آزمایش ما یک روش آزمایشی را دنبال کردیم که در مقاله‌ای که قبلا منتشر شده بود [18]. با استفاده از روش رنگ سنجی، اوره آز به پلاسما یا سرم کمی اضافه شد.پس از واکنش قبلی، آمونیاک به عنوان یک عامل رنگی اضافه شد. ترکیب قرمزپس از واکنش تولید شد و جذب در طول موج اندازه گیری شد660 نانومتر سپس غلظت BUN محاسبه شد.

2.7.2. آزمایش گلیکوژن کبدی

پس از آخرین تغذیه 30 دقیقه ای، حیوانات قربانی شدند و کبد جدا شد ودر محلول 10 درصد با نرمال سالین در دمای 4 همگن شد◦ج. گلیکوژن تجزیه شدبه گلوکز، و غلظت با استفاده از کیت های موجود اندازه گیری شد.

2.7.3. آزمایش لاکتات خون

خون 30 دقیقه پس از آخرین تغذیه جمع آوری شد. موش ها بدون بارگیری وزن شنا کردند30 ◦آب با دمای C به مدت 10 دقیقه سپس پس از 20 دقیقه استراحت مجدداً خون گرفته شدبعد از شنا خون گرفته شده تحت واکنش آنزیمی و رنگ سنجی قرار گرفتتحلیل و بررسی. لاکتات اکسیداز به پلاسما کمی اضافه شد، سپس 4-آمینو آنتی پیرینو 1،7-دی هیدروکسی نفتالین اضافه شد و یک ترکیب قرمز توسط پراکسیداز تولید شد.. جذب در طول موج 540 نانومتر اندازه‌گیری شد و غلظت آن اندازه‌گیری شدلاکتات در آن جذب محاسبه شد.

2.8. تحلیل آماریداده های به دست آمده در این پژوهش با استفاده از نرم افزار آماری SPSS مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفتبسته (نسخه 19.0، IBM.، Armonk، NY، USA). مقادیر نتایج تجربی بودبه عنوان متوسط ​​ارائه شده است± خطای استاندارد (میانگین± SEM). داده های تجربی مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتبا استفاده از آنالیز واریانس یک طرفه (ANOVA یک طرفه) برای تعیین تفاوت بینگروه ها و آزمون چند دامنه ای دانکن برای مقایسه تفاوت بین گروه ها استفاده شد.A p < 0.05="" was="" considered="" to="" indicate="" a="" significant="">

3. نتایج ضد خستگی

3.1. تاثیر وزن بدن، مقدار مصرف و حجم مصرف آب پس از شش هفتهمکمل با مجموعه ای از محصولات جانبی تیلاپیا تخمیر شده و مونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدها همراه با تمرینات بدنی

جدول1 تفاوت بین وزن بدن، متوسط ​​مصرف روزانه غذا را نشان می دهد،و مصرف روزانه آب موش های نر SAMP8 تغذیه شده با مخلوطی از محصول جانبی تیلاپیاتخمیر ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدها همراه با تمرینات ورزشی برایشش هفته. برای به حداقل رساندن سوگیری تجربی، موش ها به طور تصادفی به گروه ها تقسیم شدند. آنجاتفاوت معنی داری در وزن اولیه بدن در هر گروه وجود نداشت.

میز 1.وزن بدن، مقدار دریافتی و حجم مصرف آب موش های SAMP8 که با مخلوط تغذیه شده بودنداز محصولات فرعی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدهای ترکیب شده با ET.

نکات: داده ها به صورت میانگین بیان می شوند± S.E.M. (n = 15) و با استفاده از ANOVA یک طرفه تجزیه و تحلیل شد. داده ها نبودندتفاوت قابل توجهی (p >0.05) از یکدیگر بر اساس ANOVA. A: کنترل خالی بدون ورزش (Gr-A). ب:کنترل خالی با ورزش (Gr-B). C: 412 mg/kg BW/day محصول جانبی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومکمپلکس اولیگوساکارید همراه با تمرین ورزشی (ET) ({0}}.5 برابر دوز) (Gr-C). D: 824 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن در روزمحصول فرعی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با ET (1 برابر دوز)(Gr-D). E: 1648 mg/kg BW/day محصول جانبی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکاریدهمراه با ET (2 برابر دوز) (Gr-E).

نتایج نشان داد که تفاوت معنی داری در وزن بدن، مصرف غذا و آب وجود نداردمصرف در گروه بدون تمرین، گروه بدون تمرین و آزمایشگروه های قبل و بعد از آزمون هیچ تاثیری بر وزن بدن، غذای متوسط ​​روزانه مشاهده نشدمصرف و مصرف روزانه آب در موش های نر SAMP8 تغذیه شده با مکملمخلوطی از محصولات جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدهاهمراه با تمرین ورزشی

3.2. ارزیابی عملکرد تمرین

پس از شش هفته مصرف مکمل با مخلوطی ازمحصولات جانبی تیلاپیا تخمیر شده و الیگوساکاریدهای مونوستروما نیتیدوم همراه باآموزش ورزشزمان شنا تا خستگی یک شاخص رایج برای تمرین واکنشی استتوانایی ET می تواند به طور قابل توجهی قدرت گرفتن مطلق و نسبی را افزایش دهد. در حیوانات ازسنین مختلف و گونه های مختلف، تمرینات بدنی برای تمرینات خاص هر دو را افزایش دادقدرت گرفتن اندام جلویی و زمان شنای کامل (EST) [17,19]. مطالعه دیگری اشاره کردنشان داد که قدرت گرفتن اندام جلویی با قدرت عضلانی همبستگی مثبت دارد [20]. در ایندر این مطالعه، قدرت گرفتن اندام جلویی و EST برای ارزیابی تاثیر ورزش استفاده شدعملکرد و خستگی در موش‌ها با مخلوطی از تیلاپیا تخمیر شده تکمیل شده استمحصولات جانبی ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدهای ترکیب شده با ET.شکل1 نتایج قدرت گرفتن اندام جلویی را برای موش‌های نر SAMP8 نشان می‌دهدبا مخلوطی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدهای ترکیب شده با ET. قدرت گرفتن بالن جلویی در بیشتر بودگروه های Gr-D و Gr-E نسبت به گروه Gr-A (p < 0.05).="" figure="">2 جامع را نشان می دهدنتایج آزمون شنا برای موش‌های نر SAMP8 که با مخلوطی ازمحصولات جانبی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدهای ترکیب شده باET. همه گروه‌ها همراه با تمرین (Gr-B، Gr-C، Gr-D، Gr-E) افزایش EST را نشان دادند.در مقایسه با گروه Gr-A، با EST های قابل توجهی طولانی تر در گروه های Gr-D و Gr-E(p <>

شکل 1.تاثیر بر قدرت گرفتن اندام جلویی موش همراه با مخلوطی از محصولات جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با تمرین بدنی (داده ها به صورت میانگین بیان می شوند± S.E.M. (n = 15) و با استفاده از ANOVA یک طرفه مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. میله هایی با حروف مختلف (a، b، c) به طور قابل توجهی متفاوت هستندp < 0.05.="" a:="" gr-a,="" b:="">ج: Gr-C، D: Gr-D، E: Gr-E)

شکل 2.زمان شنای کامل موش ها با مخلوطی از محصولات جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با تمرین بدنی (داده ها به صورت میانگین بیان می شوند± S.E.M. (n = 15) و با استفاده از ANOVA یک طرفه مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. میله هایی با حروف مختلف (a, b) به طور قابل توجهی متفاوت هستندp < 0.05.="" a:="" gr-a,="" b:="" gr-b,="">Gr-C، D: Gr-D، E: Gr-E)

3.3. آنالیز بیوشیمیایی خون

جدول2 تغییرات مقدار گلوکز خون، پروتئین کل، آلبومین، تری گلیسیرید را نشان می دهدکلسترول تام (CHOL)، آلکالین فسفات (ALP)، گلوتامات اگزالواستات ترانس آمیناز(GOT)، و گلوتامات پیروات ترانس آمیناز (GPT) پس از تغذیه موش SAMP8با محصول فرعی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومترکیب الیگوساکاریدبا ET به مدت شش هفته. نتایج نشان داد که تفاوت معنی داری بین این دو وجود نداردگروه ها، نشان می دهد که تغذیه با محصول فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با ET بر سطح لیپید خون تأثیر منفی نمی گذاردباعث اختلال در عملکرد کبد و کلیه می شود.

جدول 2.مقادیر بیوشیمیایی خون موش های SMAP8 تغذیه شده با محصول جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدوممجموعه الیگوساکارید همراه با تمرین ورزشی

3.4. تجزیه و تحلیل نشانگرهای زیستی مرتبط با خستگی

3.4.1. غلظت BUN

شکل3 غلظت نیتروژن اوره خون (BUN) موش های تغذیه شده با SMAP8 را نشان می دهدبا تخمیر محصول جانبی تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکاریدبه مدت شش هفته با ET ترکیب شد. نتایج نشان داد که غلظت BUN ازگروه تمرین به طور معنی داری کمتر از گروه غیر تمرینی (Gr-A) بود (p < 0.05)="">پس از تکمیل با مخلوط محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوسترومانیتیدومکمپلکس الیگوساکارید

شکل 3.غلظت نیتروژن اوره خون (BUN) میکروفون SMAP8 تغذیه شده با محصولات جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوسترومانیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با تمرین بدنی (داده ها به صورت میانگین بیان می شوند± S.E.M. (n = 15) وتوسط آنالیز واریانس یک طرفه تجزیه و تحلیل شد. میله هایی با حروف مختلف (a، b) به طور قابل توجهی متفاوت هستندp < 0.05.a:="" gr-a,="" b:="" gr-b,="" c:="">Gr-C، D: Gr-D، E: Gr-E).3.4.2. سطح گلیکوژنشکل4 سطح گلیکوژن کبد موش های SMAP8 تغذیه شده با محصول جانبی تیلاپیا را نشان می دهدتخمیر ومونوستروما نیتیدومترکیب الیگوساکارید با ET برای ششهفته ها نتایج نشان داد که یک دوز (Gr-D) و دو (Gr-E) محصول جانبی تیلاپیاتخمیر ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با ET می تواندبه طور قابل توجهی سطح گلیکوژن کبد را در مقایسه با گروه غیر تمرینی (Gr-A) افزایش می دهد.(p < 0.05).="">3.4.3. سطح لاکتات خونجدول3 نشان‌دهنده تأثیر تست ورزش بر لاکتات در موش‌های SAMP8 است که با آن تغذیه شده‌اندمخلوطی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکاریدهمراه با تمرینات ورزشی (ET). به روش های آماری زیر اشاره می کنیماسناد و مدارک و استفاده از روش آماری ANOVA یک طرفه برای مشاهده تغییرات درسطح لاکتات بین هر گروه تفاوت معنی داری در آن مشاهده نشدسطح لاکتات خون بین این گروه ها قبل از تست ورزش. بعد از تست ورزش،غلظت لاکتات در گروه Gr-B، گروه Gr-C، گروه Gr-D وگروه G-E نسبت به گروه G-A (p < 0.05).="" after="" the="" exercise="" test,="" the="" lactate="" concentration="">در گروه های Gr-B، Gr-C، Gr-D و Gr-E به طور قابل توجهی کمتر از گروه Gr-A بود.

3.4.2. سطح گلیکوژن

شکل4 سطح گلیکوژن کبد موش های SMAP8 تغذیه شده با محصول جانبی تیلاپیا را نشان می دهدتخمیر ومونوستروما نیتیدومترکیب الیگوساکارید با ET برای ششهفته ها نتایج نشان داد که یک دوز (Gr-D) و دو (Gr-E) محصول جانبی تیلاپیاتخمیر ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با ET می تواندبه طور قابل توجهی سطح گلیکوژن کبد را در مقایسه با گروه غیر تمرینی (Gr-A) افزایش می دهد.(p < 0.05).="">3.4.3. سطح لاکتات خونجدول3 نشان‌دهنده تأثیر تست ورزش بر لاکتات در موش‌های SAMP8 است که با آن تغذیه شده‌اندمخلوطی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکاریدهمراه با تمرینات ورزشی (ET). به روش های آماری زیر اشاره می کنیماسناد و مدارک و استفاده از روش آماری ANOVA یک طرفه برای مشاهده تغییرات درسطح لاکتات بین هر گروه تفاوت معنی داری در آن مشاهده نشدسطح لاکتات خون بین این گروه ها قبل از تست ورزش. بعد از تست ورزش،غلظت لاکتات در گروه Gr-B، گروه Gr-C، گروه Gr-D وگروه G-E نسبت به گروه G-A (p < 0.05).="" after="" the="" exercise="" test,="" the="" lactate="" concentration="">در گروه های Gr-B، Gr-C، Gr-D و Gr-E به طور قابل توجهی کمتر از گروه Gr-A بود.با 20.4 درصد، 25.2 درصد، 25.7 درصد و 27.9 درصد (همهp < 0.05),="" respectively.="" after="" resting="" for="" 20="">پس از انجام تست ورزش، تفاوت معنی داری در غلظت لاکتات خون مشاهده نشدبین چهار گروه ET (Gr-B، Gr-C، Gr-D، Gr-E). سطوح پایین تر از گروه باقی ماندبرای G-A. برای میزان تولید لاکتات سرم، گروه های تمرینی (Gr-B، Gr-C، Gr-D،Gr-E) به طور قابل توجهی کمتر از گروه Gr-A نرخ کلیرانس لاکتات سرم بود. آنجابین همه گروه ها تفاوت معنی داری وجود نداشت. نتایج نشان داد که در تمامی مطالعاتگروه هایی که تمرین ورزشی دریافت کردند (Gr-B، Gr-C، Gr-D، Gr-E)، سطح لاکتات سرمکمتر و میزان کلیرانس لاکتات سرم بالاتر بود. گروه های بدون تمرین ورزشیچنین نتایجی را نشان نداد. این نشان می دهد که دادن مخلوط محصول جانبی تیلاپیاتخمیر شده بامونوستروما نیتیدومالیگوساکارید همراه با ورزش بدنی می تواندکند کردن تشکیل لاکتات

شکل 4.سطح گلیکوژن کبد موش های SMAP8 تغذیه شده با تخمیر محصول جانبی تیلاپیا ومونوستروما نیتیدوم اولیگوساکاریدمجموعه همراه با تمرین ورزشی (داده ها به صورت میانگین بیان می شوند± S.E.M. (n = 15) و توسط یک طرفه تجزیه و تحلیل شدANOVA. میله هایی با حروف مختلف (a، b) به طور قابل توجهی متفاوت هستندp < 0.05.="" a:="" gr-a,="" b:="" gr-b,="" c:="" gr-c,="" d:="" gr-d,="" e:="">

جدول 3.تأثیر تست ورزش بر لاکتات در موش‌های SMAP8 تغذیه‌شده با محصول جانبی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکارید همراه با ET.

4. بحث در مورد روش ضد خستگی

محصولات فرعی تخمیر شده نویسنده از ضایعات آبزیان تیلاپیا چین و سبز دریاییجلبکمونوستروما نیتیدوممجموعه الیگوساکاریدهای حاوی آمینو اسیدهای شاخه دار(BCAAs)، لوسین، ایزولوسین و والین. تحقیقات نشان داده است که مکمل BCAAقبل از ورزش اسکات، کاتابولیسم در ماهیچه های اسکلتی را کاهش می دهد، عضله با شروع تاخیری را کاهش می دهد.درد (DOMS) و به سنتز پروتئین ماهیچه کمک می کند. زمانی که موش ها بودندتغذیه با اسانس مرغ حاوی BCAA به مدت چهار هفته، قدرت گرفتن اندام جلویی آنها وزمان آزمون کامل شنا به طور قابل توجهی بهبود یافته است. 

بعد از مصرف مکملدرمان با پروتئین Sake غنی ​​از BCAA و تمرینات ورزشی قدرتی (PET) به مدت چهار هفته،موش‌ها قدرت چنگ زدن و زمان شنای کامل‌تری داشتند. این مطالعاتنشان داد که مکمل با BCAA به افزایش عملکرد ورزشی موش کمک کرد،مطابق با نتایج این مطالعه است. به طور خلاصه، ET همراه با مکمل توسطمحصولات فرعی تیلاپیا و جلبک سبز دریایی تخمیر شدهمونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدهاکمپلکس می تواند عملکرد ورزشی را افزایش دهد، همانطور که با افزایش EST مشاهده شد (شکل 2).2) و افزایش قدرت چنگ زدن با اندام جلویی در موش های SAMP8 (شکل 2).1). تنظیم هموستاز گلوکز خون نقش حیاتی در استقامت طولانی مدت داردورزش. هیپوگلیسمی عملکرد مغز را در حین ورزش مهار می کند و باعث ناتوانی در انجام آن می شودتمرین را ادامه دهید بنابراین، گلوکز خون یک بیوشیمیایی خون مرتبط با خستگی بسیار مهم استنشانگر. مطالعه دیگری نشان داده است که اگر گلیکوژن عضلانی و قند خوندر حین ورزش به خوبی مورد استفاده قرار می گیرند، عملکرد بهبود می یابد و تولید لاکتات خون می شودبعد از ورزش کاهش می یابد. مطالعات نشان داده اند که تمرین بدنی به تنظیم کمک می کندسطح قند خون. 

علاوه بر این، موش‌ها به مدت چهار هفته با لیموهای غنی از BCAA تغذیه شدندکاهش در کاهش عملکرد ورزشی ناشی از ورزش را نشان دادهیپوگلیسمی. این مطالعه سطوح قند خون بالاتری را در موش‌ها با مصرف مکمل نشان دادرژیم غذایی آنها با دوزهای مختلف مخلوط محصولات فرعی تیلاپیا تخمیر شده ومونوستروما نیتیدومترکیب الیگوساکارید با ET نسبت به غیر آموزشگروه (Gr-A) (جدول2). بنابراین، حدس زده می شود که مکمل با مخلوطهمراه با ET می تواند وقوع هیپوگلیسمی ناشی از ورزش را کاهش دهد (جدول2). مطالعات نشان داده اند که تمرین با شدت بالا می تواند باعث فیزیولوژیک و بیوشیمیایی شودآسیب بافتی، مانند آسیب ماهیچه های اسکلتی و نکروز سلول های عضلانی (وارن و همکاران،2001). هنگامی که عضلات آسیب می بینند، سلول های ماهیچه ای کراتین کیناز (CK) را در خون آزاد می کنند.CK می تواند یک شاخص مهم برای آسیب عضلانی باشد. کیم و همکاران به صورت تصادفی 26 کالجدانش آموزان در گروه های آزمایشی و دارونما. BCAA و دارونما تجویز شدقبل از تمرین چرخ پرواز نتایج نشان داد که مصرف مکمل با BCAA کاهش می یابدفعالیت آنزیم عضلانی سرم مرتبط با آسیب عضلانی و کاهش آسیب عضلانی استناشی از خستگی ناشی از تمرینات بدنی. 

مطالعات دیگر نشان داده است کهET می تواند سطح CK خون را افزایش دهد، که می تواند در موش ها با تغذیه غنی از BCAA کاهش یابدپروتئین آب پنیر [17]. در این مطالعه، سطح CK خون در گروه Gr-B بالاتر بود، اما وجود داشتتمایل به کاهش سطح CK در گروه مکمل (Gr-C، Gr-D، Gr-E) بود.(جدول2). مطالعات نشان داده اند که مدت و شدت ورزش بر تغییرات BUN تاثیر می گذاردتمرکز. BUN عمدتاً توسط کاتابولیسم پروتئین و اسید آمینه تولید می شود.در تجزیه پروتئین و تولید انرژی، اسید پیروویک و مقدار زیادی ازآمونیاک از طریق دآمیناسیون تولید می شود. آمونیاک باید به اوره تبدیل شودتوسط چرخه اوره کبدی و توسط سیستم گردش خون از کلیه دفع می شود.بنابراین، هنگامی که تعادل متابولیسم انرژی در طی یک دوره طولانی یا شدید از بین می رودجلسه تمرین شدید، غلظت آمونیاک خون و غلظت BUNافزایش دادن. چن و همکاران دریافتند که پس از تجویز پروتئین آب پنیر غنی از BCAA به موش هاهمراه با تمرین شنای قدرتی، غلظت BUN در کنترل ETگروه و گروه مکمل پروتئین آب پنیر ET به طور قابل توجهی کمتر ازگروه غیر ET. این نتیجه مشابه نتایج این آزمایش بود. راغلظت BUN بعد از ورزش خستگی شنا را می توان با مکمل کاهش دادبا محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومکمپلکس الیگوساکاریدهمراه با ET (شکل3).

در بدن انسان، گلیکوژن عمدتاً در کبد و ماهیچه ذخیره می شود. در حینورزش، تقاضای انرژی به دلیل انقباض عضلانی افزایش می یابد. سطح قند خونکاهش و تحریک تجزیه گلیکوژن برای حفظ منبع انرژی. کبدگلیکوژن عمدتاً برای تأمین قند و حفظ تعادل فیزیولوژیکی در طول مدت استفاده می شودتمرینات بدنی مطالعات نشان داده اند که کاهش گلیکوژن همبستگی بالایی باخستگی جسمانی کاهش مصرف گلیکوژن یا افزایش ذخیره گلیکوژن می تواند بهبود یابدظرفیت استقامت ورزش. 

پس از ورزش طولانی مدت یا با شدت بالا، ذخیره سازیگلیکوژن ماهیچه به طور قابل توجهی کاهش می یابد. سطح بالای ذخیره گلیکوژن در عضلهبرای عملکرد گلیکولیتیک در طول ورزش و بهبود استقامت ورزش مفید است. در یک مطالعه، موش هایی که به مدت شش هفته با استفاده از تمرینات شنا تمرین کردند، به طور تصادفی تقسیم شدندبه سه گروه: یکی دارونما، دیگری BCAA و گروه آخر دریافت کردندلوسین (LEU) را به مدت یک هفته دریافت کرد. بعد از هفته هفتم خستگی شنادر آزمون، میزان گلیکوژن کبد در گروه BCAA و گروه LEU معنی دار بودبالاتر از گروه دارونما. ما نتایج مشابهی را برای سطح گلیکوژن کبد به دست آوردیم.

در موش‌های SAMP8 که با مخلوطی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا تغذیه شده‌اندمونوسترومانیتیدوممجموعه الیگوساکاریدها همراه با تمرین بدنی، سطح گلیکوژن کبدبا افزایش عملکرد ورزشی و اثرات ضد خستگی افزایش یافت (شکل 1).4). برخی از پارامترهای بیوشیمیایی در مقالات مجله منتشر شده استگذشته برای ارزیابی میزان خستگی و آسیب پس از ورزش ناشی از تمرینات، مانندلاکتات، BUN، CK، آمونیاک و اسیدهای چرب آزاد. لاکتات خون ازمتابولیسم بی هوازی گلوکز در حین ورزش [33]. لاکتات متابولیتی است که توسطگلیکولیز بی هوازی گلوکز و گلیکوژن در ماهیچه و کبد.

در هنگام استراحت، لاکتاتتولید در بدن کم است. تحت ورزش شدید یا طولانی مدت، تولید لاکتاتبه دلیل مصرف بیشتر اکسیژن افزایش می یابد و متابولیسم بی هوازی را تسریع می کند.زمانی که میزان تولید لاکتات از میزان حذف بیشتر باشد، باعث تولید لاکتات می شودتجمع (OBLA، شروع تجمع لاکتات خون). تجمع لاکتاتفعالیت فسفات فروکتوز کیناز را کاهش می دهد، گلیکولیز را کاهش می دهد و pH را کاهش می دهد.سلول های ماهیچه ای به دلیل تفکیک یون هیدروژن، بر آزادسازی یون های کلسیم تأثیر می گذارداز شبکه سارکوپلاسمی و کاهش انقباض عضلانی که منجر به خستگی می شود. مطالعات نشان داده است که استفاده مناسب از گلیکوژن عضلانی و قند خون در طولورزش می تواند تولید لاکتات را کاهش دهد که می تواند عملکرد ورزش را بهبود بخشد وظرفیت استقامت. 

مطالعات گذشته نشان داده است که موش هایی با انواع مختلف ETغلظت لاکتات خون در آزمایشات شنا کمتر از کنترل غیر تمرینی استگروه ها. مطالعه ما نشان داد که مخلوط مکمل باورزش تمرینی همچنین می تواند تولید لاکتات را پس از ورزش کاهش دهد و به یک ضد خستگی دست یابداثر(جدول3). نتایج ما نشان می دهد که ترکیبی از تمرینات بدنی ومصرف مخلوط مکمل غذایی از محصولات فرعی تخمیر شده تیلاپیا ومونوستروما نیتیدومالیگوساکاریدها روشی موثر برای رفع خستگی هستند. ما پیشنهاد می کنیمکه این می تواند یک مکمل تغذیه ورزشی جدید برای کاهش خستگی باشد. بنابراین، در ادامهتحقیق در مورد اثر ضد خستگی برخی ریزمغذی ها در ضایعات آبزیان تیلاپیا مانندDHA، نقش و مکانیسم فیزیولوژیکی آن را در مطالعه بعدی ما بیشتر خواهد کرد.

5. نتیجه گیری در مورد روش ضد خستگی

در پایان، پس از انجام تمرینات بدنی برای انجام تمرینات، SAMP8موش‌های نر در عملکرد ورزش و خستگی جسمانی بهبود یافته بودندنشانگرهای زیستی، اما این مقادیر تفاوت معنی‌داری با مقادیر موجود در شاهد خالی نداشتندگروه پس از ترکیب تمرینات بدنی با مخلوط مکمل ماهی تیلاپیامحصول فرعی تخمیر ومونوستروما نیتیدومالیگوساکارید برای شش هفته، کبدذخیره گلیکوژن به طور قابل توجهی افزایش یافت، میزان لاکتات پس از ورزش کاهش یافت.نسبت لاکتات بالا کاهش یافت و غلظت BUN کاهش یافت. ESTافزایش، قدرت گرفتن اندام جلویی افزایش یافت، عملکرد ورزشی بهبود یافت، واثر ضد خستگی به دست آمد.

بهترین مراقبت از گیاه شناسی را برای تسکین ضد عفونی کننده پیدا کنید

فرمول Neuro Regen که با دقت دست ساخته شده است شامل بهترین گیاهان تحقیقاتی است. هر کدام پتانسیل شگفت انگیزی را برای مدیریت ضد خستگی، به علاوه حمایت کلی از اعصاب و نورون ها نشان می دهند.

شامل می شود:

رفع خستگی جسمی-

① سیستانچحاوی انواع پلی فنول ها و گلیکوزیدها است که می تواند فعالیت آنزیم های آنتی اکسیدانی را افزایش داده و عملکرد رادیکال های آزاد را از بین ببرد.

③ سیستانچعملکرد داردتغذیه کلیه و تقویت یانگو می تواند هیپوفیز هیپوتالاموس-هیپوفیز ناشی از ورزش سنگین را بهبود بخشد. عملکرد محور غدد جنسی باعث ترشح تستوسترون می شود، برای آنابولیسم بدن مفید است و اثرات ضد خستگی دارد.

④ سیستانچحاوی انواع مختلفی از مواد موثره است که می تواند متابولیسم انرژی بدن را ارتقاء داده و بازی کنداثر ضد خستگی