مطالعه تطبیقی ​​اثرات کورکومین و نانوذرات آن بر رشد، ایمنی و مقاومت در برابر استرس گرمایی ماهی تیلاپیا نیل (Oreochromis Niloticus)

این مطالعه اثرات مکمل های غذایی با کورکومین آزاد یا نانو را بر عملکرد رشد، وضعیت ایمنی و مقاومت به تنش گرمایی ماهی تیلاپیا نیل (Oreochromis niloticus) ارزیابی کرد. هفت جیره هم‌زمانی (28 درصد پروتئین) و هم کالری (445 کیلوکالری در 100 گرم DM) تهیه شد. شش رژیم غذایی با سه سطح نانو کورکومین (50 (CN50)، 100 (CN100)، 200 (CN200) میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) یا کورکومین آزاد (50 (C50)، 100 (C100)، 200 (C200) تکمیل شدند. ) mgkg-1 رژیم غذایی)، و جیره شاهد بدون افزودنی (CON) باقی ماند. ماهی ها (32/0 ± 54/13 گرم) (میانگین ± انحراف معیار) به مدت 65 روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند.

پس از آزمایش تغذیه، ماهی ها با افزایش تدریجی دمای آب از 25 به 40 درجه در عرض 3 ساعت در معرض استرس گرمایی حاد قرار گرفتند. سپس ماهی به مدت 4 ساعت در دمای 40 درجه قرار گرفت. نتایج نشان داد برتری نانو کورکومین نسبت به شکل آزاد آن در افزایش عملکرد رشد، با بالاترین نتایج در CN100 و به دنبال آن CN200 به دست آمد. فقط استرس گرمایی، نه رژیم‌های غذایی تجربی، پلاکت‌ها، میانگین حجم سلولی (MCV)، میانگین هموگلوبین سلولی (MCH)، لکوسیت‌ها و تعداد نوتروفیل‌ها را افزایش داد، در حالی که لنفوسیت‌ها کاهش یافت.

رابطه نزدیکی بین مقاومت در برابر استرس گرمایی و ایمنی وجود دارد. استرس گرمایی می تواند چالش های زیادی را برای بدن ایجاد کند، مانند دمای بالا، دمای پایین، گرسنگی و هیپوکسی. این چالش ها می تواند منجر به تغییراتی در محیط درون سلولی و خارج سلولی شود که واکنش استرس بدن را تحریک می کند. پس از یک دوره طولانی سازگاری، بدن می تواند مقاومت قوی تری در برابر استرس گرمایی ایجاد کند. در عین حال، استرس گرمایی نیز می تواند بر ایمنی بدن تأثیر بگذارد. پس از استرس گرمایی طولانی مدت، سیستم ایمنی بدن تا حدودی آسیب می بیند. شوک ایمنی ناشی از استرس گرمایی خطر ابتلا به عفونت را در بیماران افزایش می دهد و عملکرد سلول های ایمنی را کاهش می دهد. با این حال، استرس گرمایی متوسط ​​می تواند ایمنی را تقویت کند، زیرا سیستم ایمنی و خوددرمانی بدن را فعال می کند. بنابراین استرس گرمایی متوسط ​​می تواند مقاومت و ایمنی بدن را تقویت کند و سازگاری و میزان بقای موجودات را در محیط های پیچیده بهبود بخشد. ما انسان ها علاوه بر زیست شناسی باید به بهبود ایمنی نیز توجه کنیم. سیستانچ تاثیر بسزایی در بهبود ایمنی دارد. سیستانچ سرشار از انواع مواد آنتی اکسیدانی مانند ویتامین C، ویتامین C، کاروتنوئیدها و غیره است. این مواد می توانند رادیکال های آزاد را از بین ببرند، استرس اکسیداتیو را کاهش دهند و مقاومت سیستم ایمنی را بهبود بخشند.

روی مکمل cistanche deserticola کلیک کنید

گروه‌های CN50 و CN100 فعالیت کمتر آنزیم‌های کبدی (آلانین آمینوترانسفراز (ALT) و آسپارتات آمینوترانسفراز (AST)) را نسبت به سایر تیمارها نشان دادند، در حالی که C200 بیشترین فعالیت این آنزیم‌ها را داشت. بالاترین سطح ایمونوگلوبولین (IgM) در CN100، CN200، C100 و C200 و به دنبال آن CN50 شناسایی شد. گروه C200 سطوح بالاتری از مکمل 3 و مکمل 4 (به ترتیب C3 و C4) نسبت به سایر تیمارها نشان داد. گروه های C50 و CON کمترین مقادیر IgM، C3 و C4 را دادند. سطوح کورتیزول در گروه های CN50 و CN100 به طور قابل توجهی کمتر از سایر گروه ها بود. پس از استرس گرمایی، ALT، AST، IgM، C3، C4، کورتیزول و گلوکز افزایش یافت. بنابراین، نانو کورکومین در افزایش مقاومت در برابر استرس گرمایی، القای ایمنی ذاتی، کاهش شاخص‌های استرس و ارتقای عملکرد رشد ماهی تیلاپیا نیل با بهترین غلظت در رژیم غذایی 100 میلی‌گرم در کیلوگرم، مؤثرتر از شکل آزاد آن است.

دومین گونه رایج Fsh که پس از کپور در سطح جهان تولید می شود، ماهی تیلاپیا نیل (Oreochromis niloticus) 1،2 است. تیلاپیا در حال حاضر در بیش از 120 کشور در سراسر جهان کشت می شود. تولید جهانی تیلاپیا از کمتر از 0.5 میلیون تن (MMT) در اوایل دهه 1990 به 6.03 MMT در سال 2018 با متوسط ​​نرخ رشد سالانه 13.5 درصد افزایش یافت. مانند استرس گرمایی (HS)، پیامد اصلی گرمایش جهانی. اگرچه تیلاپیا نیل می تواند طیف وسیعی از دماها را تحمل کند (محدوده دمایی مطلوب 25-28 درجه است)، دمای آب بالاتر از محدوده بهینه ممکن است سیستم ایمنی را سرکوب کرده و به پاسخ آنتی اکسیدانی آن آسیب برساند. HS سیستم ایمنی را از طریق پاسخ های ایمنی هومورال و سلولی سرکوب می کند. به عنوان مثال، HS سطح ایمونوگلوبولین ها (IgG و IgM) را کاهش می دهد.

شاخص های اولیه پاسخ ایمنی (گلبول های سفید، گلبول های قرمز، هموگلوبین و گلوکز) نیز در طول HS8 تحت تأثیر قرار می گیرند. سیم پوزه بلانت (Megalobrama amblycephala Yih) پس از قرار گرفتن در معرض تنش گرمایی به مدت 6 ساعت، افزایش لیزوزیم، فعالیت های مکمل جایگزین، پروتئین کل و سطوح Ig M را نشان داد، بنابراین این پارامترها کاهش یافت. در نتیجه، استرس گرمایی می تواند بر سلامت ماهی تأثیر منفی بگذارد و منجر به رگرسیون رشد و مرگ و میر بالای Fsh شود. تقویت مکانیسم‌های دفاعی ماهی از طریق تجویز محرک‌های ایمنی در جیره به اولویت کنترل عوامل استرس‌زا در آبزی پروری تبدیل شده است. در میان انواع محرک‌های ایمنی، گیاهان دارویی حاوی ترکیبات شیمیایی هستند که ایمنی را از طریق مسیرهای خاص یا غیر اختصاصی تقویت می‌کنند و حیوان را در برابر عوامل استرس‌زای خارجی مقاوم‌تر می‌کنند.

کورکومین یک ماده گیاهی به رنگ زرد نارنجی، آبگریز، زیست فعال و ترکیب پلی فنلی است که از زردچوبه (Curcuma longa) استخراج می شود. ترکیبات فعال اصلی کورکومین دیفرولوئیل متان (77 درصد)، دمتوکسی کورکومین (17 درصد) و بیسدمتوکسی کورکومین (6 درصد) است. با کمال تعجب، کورکومین دارای خواص ضد ویروسی، ضد قارچی، ضد التهابی، آنتی اکسیدانی و ضد سرطانی است 14-17. بنابراین، کورکومین می تواند سیستم ایمنی ذاتی را در fsh18،19 تحریک کند. چندین مطالعه اثرات مفید کورکومین را به عنوان یک محرک ایمنی و آنتی اکسیدان بالقوه در رژیم غذایی گونه های مختلف ماهی نشان داده اند. با این حال، حلالیت ضعیف در آب و فراهمی زیستی، کاربردهای عملی کورکومین را محدود می‌کند.

اخیراً، نانو کورکومین برای جلوگیری از خواص انتقال ضعیف کورکومین و افزایش اثرات درمانی آن ساخته شده است. برخلاف کورکومین که به دلیل حلالیت کم در آب کلوخه تشکیل می دهد، نانو کورکومین به طور کامل در محیط آبی حل می شود و به دلیل وجود پتانسیل زتا هیچ توده ای تشکیل نمی دهد. در مقایسه با کورکومین آزاد، نانو کورکومین نفوذپذیری بالاتر، گردش خون طولانی‌تر و فراهمی زیستی سیستمیک بهتر در پلاسما و بافت‌ها نشان داد.

به گفته جیانگ و همکاران 31 کورکومین بارگذاری شده در نانوکره ها فعالیت آنتی اکسیدانی و ایمنی آن را تحریک می کند. این اثرات ممکن است با کاهش ذرات در مقیاس نانومتری مرتبط باشد که آزادسازی پایدار مواد فعال را تضمین می‌کند و فراهمی زیستی و سطوح پراکندگی مولکولی را افزایش می‌دهد. اگرچه هیچ مطالعه ای برای مقایسه اثر نانو کورکومین با شکل آزاد آن بر روی Fsh انجام نشده است، اما اخیراً روی پرندگانی مانند بلدرچین ژاپنی (Coturnix japonica) آزمایش شده است. Marchiori و همکاران 32 دریافتند که کورکومین نانوکپسوله شده عملکرد بلدرچین های ژاپنی (Coturnix japonica) را با دوز سه برابر کمتر از کورکومین آزاد بهبود می بخشد که نشان دهنده پتانسیل نانو مواد برای بهبود تولید حیوانی است.

تا به حال، نانو کورکومین در رژیم غذایی ماهی آزمایش نشده است. بنابراین، این مطالعه با هدف بررسی اثرات مکمل‌های غذایی با فرم آزاد یا نانو کورکومین بر بهبود عملکرد رشد، وضعیت ایمنی و مقاومت به تنش گرمایی در ماهی تیلاپیا نیل انجام شد.

مواد و روش ها جیره های آزمایشی.

ترکیب و آنالیز شیمیایی جیره های آزمایشی در جدول 1 نشان داده شده است. هفت جیره ایزونیتروژن (28 درصد پروتئین) و ایزوکالری (445 کیلو کالری / 100 گرم DM) تهیه شد. شش رژیم غذایی با سه سطح نانو کورکومین (50 (CN50)، 100 (CN100)، 200 (CN200) میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) یا کورکومین آزاد (50 (C50)، 100 (C100)، 200 (C200) تکمیل شدند. ) mgkg-1 رژیم غذایی)، و جیره شاهد بدون افزودنی (CON) باقی ماند. مواد خشک و ریز آسیاب شده در حین افزودن روغن ها با دست کاملا مخلوط شدند. پس از آن، با اضافه کردن تدریجی آب گرم، تمام مواد ورز داده شد. خمیر با استفاده از چرخ گوشت با قطر مناسب گلوله شد. جیره ها در آفتاب خشک شدند و در دمای {20}} در شیشه های پلاستیکی نگهداری شدند.

ماهی و امکانات آزمایشی

بچه ماهیان تیلاپیا نیل (Oreochromis niloticus) از یک مزرعه تجاری در نزدیکی اسکندریه به دست آمد و در یک مخزن فایبر گلاس (1 متر مکعب) در آزمایشگاه پرورش ماهی در موسسه ملی اقیانوس شناسی و شیلات، شعبه اسکندریه، مصر نگهداری شد. یکصد و شصت و هشت FSH (13.54±0.32 گرم) در 21 آکواریوم شیشه ای (70 L آکواریوم-1) با تراکم 8 ماهی در هر آکواریوم ذخیره شد. هر تیمار شامل 3 تکرار (A، B و C) بود. ماهی ها به مدت 2 هفته با آکواریوم سازگار شدند و برای تطبیق با جیره های آزمایشی از جیره شاهد تغذیه شدند. ماهی ها به مدت 65 روز سه بار در روز تا سیر شدن با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. آب لوله کشی دکلره با هوادهی مداوم به هر آکواریوم ارائه شد. مقدار خوراک مصرفی در هر تیمار به صورت هفتگی با تفاوت وزن ظروف غذا قبل و بعد از تغذیه محاسبه شد. دوره نوری به ترتیب 12 ساعت: 12 ساعت روشنایی: تاریک تنظیم شد. پارامترهای کیفیت آب در طول مدت آزمایش هر هفته با استفاده از فوتومتر چندپارامتری آبزی پروری هانا، HI83303 پایش شد. دمای آب، اکسیژن محلول، آمونیاک-N و pH به شرح زیر ثبت شد. 2.1±25 درجه، 6.4 میلی گرم در لیتر، 0.05 میلی گرم در لیتر، و 7.7 به ترتیب. پس از قرار گرفتن در معرض تنش گرمایی (40 درجه)، اکسیژن محلول و آمونیاک N در مخزن ماهی به ترتیب 2.1 میلی گرم در لیتر و 0.62 میلی گرم در لیتر بود. دو ساعت پس از تغذیه، مدفوع با سیفون خارج شد.

اعلامیه اخلاقی

آزمایش‌ها با دستورالعمل‌هایی انجام شد که توسط مؤسسه ملی اقیانوس‌شناسی و کمیته ماهیگیری برای مراقبت نهادی از موجودات آبزی و حیوانات آزمایشی (NIOF-IACUC)، مصر، مشخص و تأیید شد.

آماده سازی کورکومین و نانو کورکومین.

کورکومین و نانو کورکومین توسط بخش تحقیقاتی نانوتک مصر برای فوتوالکترونیک و نانوتکنولوژی تهیه شد. نانو کورکومین از طریق روش احیا که توسط Dhivya و همکارانش توضیح داده شد، تهیه شد. طیف جذب UV-Vis بر روی یک اسپکتروفتومتر Ocean Optics USB2{17}}00 plus VIS-NIR فیبر نوری بدست آمد. برای بررسی مورفولوژی سطح و اندازه نانوذرات، از میکروسکوپ الکترونی عبوری با وضوح بالا (TEM)، JEOL JEM{6}} استفاده شد. تصویربرداری TEM شکل تقریبا کروی، سطح صاف و توزیع اندازه یکنواخت تقریباً 5.5±50 نانومتر نانو کورکومین را نشان داد (شکل 1). توزیع اندازه ذرات و پتانسیل زتا ذرات نانو کورکومین توسط ابزار Zetasizer Malvern (Malvern, UK), نسخه 7.13، شماره سریال: MAL 1203718 تعیین شد. پتانسیل زتا (mV) و انحراف زتا (mV) -25 0.0 و 4.16 به ترتیب (شکل 2).

عملکرد سازنده

تمام ماهی های موجود در هر مخزن قبل از شروع و در پایانه آزمایش تغذیه جمع آوری و وزن شدند. رشد، مصرف خوراک و سایر شاخص های بیومتریک بر اساس معادلات زیر محاسبه شد:

ترکیب شیمیایی بدن

قبل از شروع آزمایش تغذیه، 10 ماهی به طور تصادفی نمونه برداری و در درجه -20 برای تجزیه و تحلیل بیوشیمی کل بدن منجمد شدند. در پایان آزمایش تغذیه، شش ماهی در هر تیمار برای تجزیه و تحلیل بیوشیمیایی کل بدن نمونه برداری شد. تمام نمونه ها بلافاصله در دمای 20- درجه تا تجزیه و تحلیل منجمد شدند. روش AOAC34 برای ارزیابی پروتئین خام، چربی، رطوبت و محتوای خاکستر تمام نمونه ها دنبال شد.

نمونه گیری خون.

پس از آزمایش تغذیه، شش ماهی در هر تیمار برای تجزیه و تحلیل خون نمونه برداری شد. روغن میخک (0.1 ml L-1) برای بیهوش کردن ماهی استفاده شده است. نمونه های خون (1 میلی لیتر) از ورید دمی ماهی در میکرولوله های پلاستیکی حاوی یک ضد انعقاد (دی پتاسیم اتیلن دی آمین تتراستیک اسید، EDTA) برای نگهداری نمونه ها برای استفاده در سنجش هماتولوژی جمع آوری شد. یک میلی لیتر خون از هر نمونه در میکروتیوب های بدون ضد انعقاد جمع آوری شد و به مدت 10 دقیقه در 2500×g سانتریفیوژ شد تا سرم جدا شود که برای سنجش بیوشیمی اختصاص داده شد.

سنجش هماتولوژیک.

گلبول های قرمز، هماتوکریت (HCT)، هموگلوبین (HGB)، حجم متوسط ​​سلولی (MCV)، میانگین هموگلوبین گلبولی (MCH)، میانگین غلظت هموگلوبین سلولی (MCHC)، پلاکت ها (PLT)، لکوسیت ها و تعداد دیفرانسیل (نوتروفیل ها (NEUT)، لنفوسیت ها (LYMPH))، مونوسیت ها (MON)، ائوزینوفیل (EO)، بازوفیل ها (BAS) و گرانولوسیت های نابالغ (IG) با استفاده از هموسیتومتر خودکار XE 2100 (Advia 2120 & Sysmex، زیمنس) شمارش شدند. تمامی شاخص های ذکر شده قبل و بعد از تنش گرمایی ارزیابی شدند.

بیوشیمی سرم

آلانین آمینوترانسفراز سرم (ALT)، آسپارتات آمینوترانسفراز سرم (AST)، ایمونوگلوبولین M (IgM)، مکمل های 3 و 4 (به ترتیب C3 و C4)، غلظت کورتیزول و گلوکز در سرم نمونه های خون مورد بررسی قرار گرفت. گلوکز بر اساس روش هگزوکیناز35 با استفاده از بسته Cobas (شماره مرجع، 04404483 190) از طریق آنالایزر Cobas-c 311، system-ID 0768316 تجزیه و تحلیل شد. کورتیزول بر اساس تشکیل روش کمپلکس ایمنی مربوطه36 از طریق بسته ایمونواسی الکتروشیمیلومینسانس "ECLIA" (شماره مرجع، 11875116 122) با استفاده از تحلیلگر ایمونواسی Cobas-e مورد سنجش قرار گرفت. تجزیه و تحلیل ALT با استفاده از بسته Cobas C (شماره مرجع، 207649q57 322)، تحلیلگر Cobas-C 311، سیستم ID 0,764,957 انجام شد. ALT بر اساس برگمایر و همکاران 37 و ECCLS38 شناسایی شد. ALT واکنش بین ال-آلانین و 2-اکسوگلوتارات را کاتالیز کرد. پیروات تشکیل‌شده توسط NADH در واکنشی که توسط لاکتات دهیدروژناز (LDH) کاتالیز می‌شود تا L-لاکتات و NAD کاهش می‌یابد. سرعت اکسیداسیون NADH با فعالیت کاتالیزوری ALT نسبت مستقیم دارد.

با اندازه گیری کاهش جذب مشخص می شود. AST در نمونه، انتقال یک گروه آمینو بین ال-اسپارتات و 2-اکسوگلوتارات را برای تشکیل اگزالواستات و ال-گلوتامات کاتالیز کرد. سپس اگزالواستات با NADH در حضور مالات دهیدروژناز (MDH) واکنش داد تا NAD را تشکیل دهد. این سنجش از توصیه‌های IFCC پیروی می‌کرد اما بر اساس برگمایر و همکاران 37 و ECCLS38 با استفاده از بسته c Cobas (شماره مرجع، 20764949322) از طریق تحلیلگر Cobas-C 311 بهینه‌سازی شد. سیستم lD 076494I. IgM بر اساس اصل آگلوتیناسیون ایمونولوژیک39 از طریق Cobas c 311 با شناسه سیستم 0767883 با استفاده از بسته کوباس c (شماره مرجع 03507190) تعیین شد. آنتی بادی ها و آنتی ژن های IgM در نمونه با یکدیگر واکنش نشان دادند و یک کمپلکس آنتی ژن/آنتی بادی تشکیل دادند. پس از آگلوتیناسیون، این به صورت کدورت در طول موج زیر / اصلی: 700/340 اندازه گیری شد. C3 و C4 با تشکیل یک رسوب از طریق افزودن یک آنتی سرم خاص و سپس کدورت سنجی در طول موج زیر / اصلی: 700/34039 تعیین شدند. C3 از طریق Cobas c 311 با شناسه سیستم 0765600 با استفاده از بسته c Cobas (شماره مرجع 03001938322) اندازه گیری شد. C4 از طریق Cobas c 311 با شناسه سیستم 0765619 با استفاده از بسته c Cobas (شماره مرجع 03001962322) تجزیه و تحلیل شد.

استرس گرمایی

پس از پایان آزمایش تغذیه، پنج ماهی از هر تکرار از آکواریوم های شیشه ای آزمایشی جمع آوری و به یک مخزن فایبر گلاس تنی حاوی 7 واحد پرورشی (7-) منتقل شدند. L ظروف استوانه ای پلاستیکی سوراخ دار). هر ظرف نشان دهنده یک کپی از هر درمان است. تکرارهای A، B و C هر تیمار به ترتیب در روزهای اول، دوم و سوم در معرض تنش گرمایی قرار گرفته اند. بنابراین، چالش تنش گرمایی سه بار در سه روز متوالی تکرار شد. دمای آب به تدریج از 25 به 40 درجه در عرض 3 ساعت افزایش یافت. دمای آب توسط ترموستات مصنوعی کنترل می شد. پس از قرار گرفتن در معرض 40 درجه به مدت 4 ساعت، Fsh از هر واحد با استفاده از روغن میخک بیهوش شد. نمونه های خون برای تعیین ALT، AST، IgM، C3 و C4، سطح گلوکز و کورتیزول و همچنین شمارش هماتولوژیک ماهی جمع آوری شد.

تحلیل آماری.

داده های مربوط به عملکرد رشد و استفاده از خوراک با استفاده از تجزیه و تحلیل واریانس یک طرفه (ANOVA) پردازش شد. برای ارزیابی اثر تنش گرمایی و جیره های آزمایشی بر روی ماهی از آنالیز واریانس دوطرفه استفاده شد. برای رتبه بندی میانگین ها از آزمون تعقیبی دانکن استفاده شد. P کمتر یا مساوی 0.05 از نظر آماری معنی دار در نظر گرفته شد. تمامی آمارها با استفاده از بسته SPSS (نسخه 23.0) پردازش شدند.

اعلام.

همه روش ها توسط دستورالعمل ARRIVE 2 گزارش شده است.{1}}.

نتایج

عملکرد رشد و استفاده از خوراک.

عملکرد رشد و نتایج استفاده از خوراک ماهی های تغذیه شده با جیره های آزمایشی در جدول 2 ارائه شده است. بالاترین وزن نهایی (FW) و افزایش وزن (WG) در CN1 تغذیه شده با Fsh00 و به دنبال آن به دست آمد. CN200 (P کمتر یا مساوی با 0.05). ماهی‌های تغذیه شده با CN5{35}} FW و WG متوسطی دادند و شبیه به ماهی‌های تغذیه شده با C10{47}} بودند (P بزرگتر یا مساوی 0).0 5). کمترین نتایج WG در CON، C50 یا C200 با fsh تغذیه ثبت شد (P کمتر یا مساوی 0.05). ماهی های تغذیه شده با CN100 و CN200 بالاترین نرخ رشد ویژه (SGR) را نشان دادند و به دنبال آن CN50 و C100 (P کمتر یا مساوی 0.05) قرار گرفتند. با این حال، SGR در CN200 تغذیه شده با fsh تفاوت معنی داری با CN50 یا C100 نداشت (P بزرگتر یا مساوی 0.05). گروه های ماهی CON، C50 و C200 کمترین SGR را تولید کردند (P کمتر یا مساوی 0.05). بالاترین نتیجه میانگین افزایش روزانه (ADG) در گروه CN100 و پس از آن CN200 و سپس CN50 و C100 ثبت شد (P کمتر یا مساوی 0.05). گروه های CON، C50 و C200 کمترین مقادیر ADG را نشان دادند (P کمتر یا مساوی 0.05). بیشترین مصرف خوراک (FI) در گروه‌های CN50، CN100، CN200 و C100 و به دنبال آن گروه‌های CON، C50 و C200 (P کمتر یا مساوی 0.05) ثبت شد. کمترین FCR در CN100 و CN200 و به دنبال آن CN50 و C100 مشاهده شد، در حالی که بالاترین مقادیر FCR در CON، C50 و C200 مشاهده شد (P کمتر یا مساوی 0.05). گروه‌های CN100 و CN200 بالاترین مقادیر نسبت کارایی پروتئین (PER) و به دنبال آن CN50 و C100 را دادند در حالی که کمترین مقادیر در CON، C50 و C200 (P کمتر یا مساوی 0.05) تولید شد.

ترکیب شیمیایی بدن

نتایج ترکیب شیمیایی تقریبی ماهی تیلاپیا نیل تغذیه شده با جیره های آزمایشی در جدول 3 نشان داده شده است. هیچ گونه تغییر معنی داری در ماده خشک در بین گروه های مختلف وجود نداشت (P بزرگتر یا مساوی 0).05. ). بالاترین مقادیر پروتئین خام (CP) در CN50، CN100، CN200 و C100 و به دنبال آن CON، C50 و C200 (P کمتر یا مساوی) به دست آمد. به 0.05)؛ با این حال، C50 تفاوت معنی داری با CN50، CN100، و C100 نداشت (P بزرگتر یا مساوی 0.05). همه تیمارها نسبت چربی خام بالاتری نسبت به CON داشتند (P کمتر یا مساوی 0.05). بیشترین نتایج خاکستر در CON و C200 و به دنبال آن C50 و کمترین نتایج در CN50، CN100، CN200 و C100 (P کمتر یا مساوی 0.05) مشاهده شد.

آنالیز هماتولوژیک

جدول 4 آنالیز هماتولوژیک ماهی را پس از آزمایش تغذیه در دمای 25 درجه و پس از تنش گرمایی در 4{3}} درجه نشان می دهد. نتایج نشان داد که رژیم‌های غذایی تجربی و استرس گرمایی به‌طور معنی‌داری بر برخی پارامترهای خونی تأثیر می‌گذارد (P کمتر یا مساوی 0.05). جیره های آزمایشی بر شمارش هماتولوژیک تأثیری نداشت (P بزرگتر یا مساوی {{10}}.05) به جز C200 که لکوسیت های بالاتر و تعداد نوتروفیل ها را در مقایسه با سایر رژیم های آزمایشی نشان داد (P کمتر از یا برابر با 0.05). با این حال، پس از استرس گرمایی، افزایش تعداد پلاکت‌ها، MCV، MCH، لکوسیت‌ها و نوتروفیل‌ها مشاهده شد، در حالی که تعداد لنفوسیت‌ها کاهش یافت (P کمتر یا مساوی 0.05) و تأثیری بر سایر هماتولوژیک‌ها نداشت. پارامترها (P بزرگتر یا مساوی 0.05).

تجزیه و تحلیل بیوشیمیایی خون

نتایج آنالیز بیوشیمیایی خون قبل و بعد از تنش گرمایی ماهی تیلاپیا نیل تغذیه شده با جیره های آزمایشی در جدول 5 نشان داده شده است. تأثیر عمیقی از رژیم غذایی و استرس گرمایی بر پارامترهای بیوشیمیایی خون Fsh وجود دارد (P کمتر یا برابر). به 0.05). ALT بیشترین فعالیت را در C200 و به دنبال آن CON و C100 و سپس C50 و CN200 نشان داد، در حالی که کمترین مقدار در تیمارهای CN50 و CN100 به دست آمد (P کمتر یا مساوی 0.05) . بیشترین فعالیت AST در C200 و به دنبال آن تیمارهای C100 و CON و پس از آن C50 داده شد، در حالی که کمترین فعالیت در تیمارهای CN50، CN100 و CN200 مشاهده شد (P کمتر یا مساوی 0.05). با این حال، مقدار AST در CN200 تفاوت معنی‌داری با C50 نداشت (P بزرگتر یا مساوی 0.05).

بالاترین سطوح IgM در C200، C100، CN100 و CN20 به دست آمد. 0 به دنبال آن CN50، در حالی که C50 و CON کمترین مقادیر را دادند (P کمتر یا مساوی 0.05). C200 بالاترین سطح C3 را نشان داد و به دنبال آن CN50 (P کمتر یا مساوی 0.05) بود، در حالی که C100، CN100 و CN200 تفاوت قابل توجهی با C200 یا CN50 نداشتند (P بزرگتر یا مساوی 0.05). C50 و CON کمترین مقادیر را برای C3 دادند (P کمتر یا مساوی 0.05). بالاترین مقادیر C4 در C200 و CN200 و به دنبال آن CN50 و سپس CN100 و C100 یافت شد، در حالی که C50 و CON کمترین نتایج را دادند (P کمتر یا مساوی 0.05). C200 بالاترین مقدار کورتیزول را داد، به دنبال آن CON، پس از آن C100، و سپس CN200 و C50 (P کمتر یا مساوی 0.05). کمترین نتایج کورتیزول برای CN50 و CN100 ثبت شد (P کمتر یا مساوی 0.05). گلوکز بدست آمده در C200 و CON بالاتر از سایر تیمارها بود (P کمتر یا مساوی 0.05). افزایش ALT، AST، IgM، C3، C4، کورتیزول و گلوکز پس از استرس گرمایی مشاهده شد (P کمتر یا مساوی 0.05).

بحث

در مطالعه حاضر، تغذیه ماهی تیلاپیا نیل با جیره‌های حاوی کورکومین منجر به نتایج رشد قابل توجهی در مقایسه با رژیم غذایی کنترل شد. علاوه بر این، این مطالعه به طور قابل توجهی برتری نانو کورکومین را نسبت به شکل آزاد آن در بهبود عملکرد رشد ماهی تیلاپیا نیل نشان می‌دهد. در مطالعه حاضر، بهترین عملکرد رشد (WG، SGR، و ADG) و استفاده از خوراک (FCR و PER) ماهی تیلاپیا نیل در 100 میلی‌گرم بر کیلوگرم در کیلوگرم و به دنبال آن یک رژیم غذایی 200 میلی‌گرم در کیلوگرم در کیلوگرم نانو کورکومین به دست آمد. . این در توافق با محمود و همکاران 23 است که دریافتند تغذیه ماهی تیلاپیا نیل (Oreochromis niloticus) با 50 یا 100 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی کورکومین باعث افزایش عملکرد رشد و استفاده از خوراک می شود. آنها این بهبود در عملکرد رشد و استفاده از خوراک را با بهبود فعالیت آنزیم های گوارشی (آمیلاز، پروتئاز، تریپسین و لیپاز) 22،40 مرتبط کردند. علاوه بر این، کورکومین می‌تواند آنزیم‌های دیگر (Na plus /K به علاوه -ATPase، آلکالین فسفاتاز روده، گاما گلوتامیل ترانس پپتیداز و کراتین کیناز) را که مسئول تجزیه و جذب مواد مغذی هستند، تقویت کند. علاوه بر این، کورکومین ممکن است به عنوان یک پری بیوتیک عمل کند، منافذ روده را تقویت کرده و هضم و جذب روده را بهبود بخشد و در نتیجه سلامت کلی و رشد Fsh40 را بهبود بخشد. اثرات مثبت مکمل های غذایی کورکومین در گونه های مختلف ماهی مانند کپور علف (Ctenopharyngodon ideas)41، کپور صلیبی (Carassius auratus)22، غوغاگر زرد بزرگ (Pseudosciaene crocea)42، قزل آلای رنگین کمان (Oncorchusskhyssian) آشکار شده است. ماهی باس (Lates calcarifer)43.

همانطور که قبلا ذکر شد، مطالعه حاضر برای نانوذرات کورکومین نسبت به کورکومین آزاد در افزایش سرعت رشد ماهی تیلاپیا نیل برتری دارد. به عبارت دیگر، دوز پایین‌تر نانو کورکومین می‌تواند عملکرد رشد ماهی تیلاپیا نیل را افزایش دهد و اثراتی مشابه دوز بالاتر کورکومین آزاد داشته باشد. به عنوان مثال، یک رژیم غذایی 50 میلی گرم در کیلوگرم در کیلوگرم نانو کورکومین همان تأثیرات یک رژیم غذایی 100 میلی گرم در کیلوگرم در کیلوگرم کورکومین آزاد را داشت. در حمایت، نانو کورکومین افزایش 60- برابری در نیمه عمر بیولوژیکی در مقایسه با کورکومین آزاد در مدل‌های موش نشان داد. علاوه بر این، نانو کورکومین در مقایسه با کورکومین آزاد30 فراهمی زیستی سیستمیک بالاتری را در پلاسما و بافت‌ها نشان می‌دهد. این ممکن است به دلیل حلالیت کم کورکومین آزاد در آب باشد. بنابراین، سنگدانه ها را تشکیل می دهد و مستعد اپسونیزاسیون است، در حالی که نانو کورکومین به دلیل پتانسیل زتا، کاملاً بدون تجمع در آب حل می شود.

افزودن کورکومین آزاد، و نانو کورکومین، در بالاترین سطح (200 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) در مطالعه فعلی باعث کاهش عملکرد رشد و استفاده از خوراک در مقایسه با CON شد. در واقع کورکومین یک پلی فنول است. گزارش شده است که دوزهای پایین پلی فنول ها می توانند در بافت های بدن تجمع پیدا کنند، جایی که به طور کامل در روده جذب نمی شوند. پلی فنل ها در سطوح بالا ممکن است باعث رگرسیون رشد شوند46. این اثر در تیمارهای نانو کورکومین کمتر بود، که نشان می‌دهد نانو کورکومین ممکن است ایمن‌تر از شکل آزاد آن باشد. در حمایت، لی و همکاران 47 ایمنی زیستی استفاده از نانو کورکومین را نشان دادند.

در مطالعه حاضر کورکومین و نانو کورکومین باعث افزایش محتوای پروتئین خام و چربی در بدن ماهی شدند. به طور مشابه، مکمل غذایی با کورکومین در سطوح 50-200 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی به طور قابل توجهی رسوب چربی خام و پروتئین را در عضلات تیلاپیا نیل بهبود بخشید. این می تواند مربوط به تنظیم میکروبیوتای روده باشد که استفاده کارآمد از مواد مغذی را افزایش می دهد. توضیح دیگر می تواند اثرات مفید کورکومین بر فعالیت آنزیم های گوارشی ماهی از جمله تریپسین، لیپاز و آمیلاز22 باشد. علاوه بر این، ذرات با بار منفی مانند نانو کورکومین، سرعت جذب پروتئین‌های سرم را کاهش می‌دهند و در نتیجه نیمه عمر گردش خون بیشتر از ذرات با بار مثبت است. این می تواند توضیح دهد که چرا جیره های تغذیه شده با ماهی حاوی نانو کورکومین محتوای پروتئین خام بالاتری نسبت به رژیم های غذایی با کورکومین آزاد تغذیه شده با ماهی دارند.

هر گونه افزایش در فعالیت آنزیم های کبدی، مانند ALT و AST، نشانگر بیولوژیکی آسیب کبدی است49،50. در مطالعه حاضر، سطوح ALT و AST در گروه‌های نانو کورکومین قبل یا بعد از استرس گرمایی و تا حدی در گروه‌های کورکومین آزاد کاهش یافت که نشان‌دهنده مزایای نانو کورکومین بود (این موضوع قبلاً در این بحث توجیه شد. ). به طور مشابه، کورکومین می تواند از سمیت کبدی در موش های صحرایی ناشی از پراکسید هیدروژن جلوگیری کرده و سطح آنزیم های ALT و AST را کاهش دهد. علاوه بر این، نتایج تجربی در موش‌های مبتلا به فیبروز ناشی از تتراکلرید کربن (CCl4) نشان داد که نانو کورکومین به طور قابل‌توجهی سطوح ALT و AST 52 را کاهش می‌دهد. بنابراین، توانایی کورکومین در کاهش برخی از نشانگرهای خونی (مانند ALT و AST) نشان‌دهنده توانایی آن به عنوان یک ضد است. - عامل التهابی در هنگام آسیب کبدی53.

علیرغم اثرات محافظتی کورکومین در برابر آسیب کبدی در این مطالعه در غلظت متوسط ​​(100 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی)، اثرات نامطلوب در غلظت بالاتر (200 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) ظاهر شد. با پیروی از همین الگو، کورکومین همچنین در ماهی کپور غول پیکر (Cyprinus carpio)، که از آسیب کبدی ناشی از CCl رنج می برد، اثر وابسته به غلظت نشان داد. به طور مشابه، کورکومین بسته به غلظت، اثرات دوگانه ای بر آسیب کبدی الکلی در موش های صحرایی نر دارد، زیرا اثر محافظتی آن تنها در غلظت کم به دست آمد، اما تسریع آسیب کبدی در غلظت بالاتر 55 مشاهده شد. مطالعه دیگری در موش‌ها نشان دادند که غلظت بالا با مصرف طولانی‌مدت کورکومین می‌تواند باعث کاهش وزن بدن، تسریع استرس اکسیداتیو و التهاب و تحریک آسیب کبدی و در عین حال افزایش سطح AST و -GGT شود.

اثر دوگانه کورکومین ممکن است به توانایی آن در تحریک هم اکسیژناز-1 (HO-1) در غلظت‌های غیر سمی و سمی مرتبط باشد و القای HO{3}} با تولید گونه های فعال اکسیژن (ROS)، که یک رابطه علی را نشان می دهد. به طور مشابه، Cao و همکاران 58 دریافتند که در غلظت‌های پایین‌تر، کورکومین با القای فعالیت‌های آنتی‌اکسیدانی اثرات مفیدی دارد. با این حال، غلظت‌های بالاتر سطوح ROS سلولی را افزایش می‌دهد که منجر به آسیب اکسیداتیو DNA در سلول‌های هپاتوم G2 انسان می‌شود.

استرس گرمایی شاخص های استرس مانند سطح کورتیزول و گلوکز را افزایش می دهد. در مطالعه حاضر، گنجاندن کورکومین (به استثنای دوز بالای 200 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) یا نانو کورکومین در رژیم غذایی تیلاپیا باعث کاهش گلوکز و کورتیزول قبل یا بعد از استرس گرمایی شد. بهترین سطح کورتیزول در CN50 و CN100 شناسایی شد. این احتمالاً با ماهیت کورکومین به عنوان یک پلی فنل توجیه می شود. نشان داده شده است که پلی فنول ها شاخص های استرس کورتیزول و گلوکز را بهبود می بخشند 59،60). این اثرات را می توان به خواص ضد اکسیداسیون کورکومین نیز نسبت داد که مشخص شده است رادیکال های لیپیدی را در غشای سلولی از بین می برد و به رادیکال فنوکسیل تبدیل می شود. علاوه بر این، کورکومین با افزایش جذب گلوکز از طریق تنظیم مثبت بیان ژن GLUT2، GLUT3 و GLUT4، سطح گلوکز کبدی را کاهش می دهد. در حمایت، وی و همکاران 63 نشان دادند که کورکومین رژیم غذایی کورتیزول ناشی از استرس را به میزان قابل توجهی در خوک ها به میزان یک سوم کاهش می دهد.

با این حال، در این مطالعه، غلظت بالاتر کورکومین (200 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) منجر به سطح بالاتر کورتیزول در مقایسه با سایر تیمارها، از جمله گروه کنترل شد. به موازات آن، C200 سطح بالاتری از گلوکز مشابه سطح گلوکز به دست آمده توسط گروه کنترل تولید کرد. همین اثر در مرغ‌های تخم‌گذار گزارش شد، جایی که دوزهای بالاتر کورکومین باعث کاهش کورتیزول در مقایسه با غلظت‌های پایین‌تر که سطوح کورتیزول را قبل یا بعد از قرار گرفتن در معرض دمای بالا کاهش می‌دهد، گزارش شد. زیرا بسته به دوز آن می تواند به عنوان یک آنتی اکسیدان و/یا اکسیدان عمل کند. غلظت بالای پراکسیدها باعث افزایش ترشح ROS می شود که به سلول ها و بافت ها آسیب می رساند.

در این مطالعه، جیره‌های آزمایشی تأثیری بر شمارش هماتولوژیک نداشتند، به‌جز C200 که لکوسیت‌های بالاتر و نوتروفیل‌های کمتری نسبت به سایر رژیم‌های آزمایشی داشت. افزایش تعداد لکوسیت ها در سطح بالایی از کورکومین (200 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی) ممکن است بر وضعیت استرس زا ماهی در این غلظت تأکید کند. لکوسیتوز مستقیماً با شدت استرس و همچنین آسیب ناشی از استرس که متعاقباً باعث تحریک سیستم دفاعی ایمنی می شود، متناسب است.

دما بر پارامترهای خونی در fsh68 تأثیر می گذارد. در این راستا، پس از استرس گرمایی، تعداد پلاکت‌ها، MCV، MCH، لکوسیت‌ها و نوتروفیل‌ها افزایش یافت و تعداد لنفوسیت‌ها کاهش یافت و تأثیری بر سایر پارامترهای خونی در مطالعه حاضر نداشت. در حمایت، Grzelak و همکاران 69 لنفوپنی و نوتروفیلی قابل توجهی را در گورخرماهی تحت استرس حاد (Danio rerio) در مقایسه با Fsh بدون تنش یا کنترل گزارش کردند. علاوه بر این، تنش حرارتی منجر به هیپوکسی یا بی‌اکسی 70،71 می‌شود و این اثر در مطالعه حاضر گزارش شده است. به نوبه خود، مشخص شد که هیپوکسی تعداد لکوسیت‌ها، پلاکت‌ها و نوتروفیل‌ها را افزایش می‌دهد و تعداد لنفوسیت‌ها را در تیلاپیا قرمز 72 کاهش می‌دهد. این ممکن است با افزایش سطح کورتیزول 72 مرتبط باشد. نوتروفیلی و لنفوپنی پس از درمان با کورتیزول آشکار شد. در کپور (C. carpio L.)73. ماهی کپور (Carassius carassius) پس از قرار گرفتن در معرض استرس نسبت بالایی از نوتروفیل ها به لنفوسیت ها را در خون تولید کرد که ارتباط نزدیکی با افزایش سطح گلوکوکورتیکوئید 74 دارد.

ایمونوگلوبولین M و مکمل ها (C3 و C4) اجزای اصلی سیستم ایمنی ذاتی ماهی ها هستند و جزو اولین خطوط دفاعی سیستم ایمنی هستند و نقش مهمی در محافظت از سلامت ماهی دارند75-78. IgM و مکمل ها نقش مهمی در محافظت از بدن حیوان در برابر عفونت در هنگام استرس، و همچنین ترویج جذب سلول های آپوپتوز و آسیب دیده ایفا می کنند79-82. در واقع، قبل و بعد از استرس گرمایی در مطالعه حاضر، سطوح IgM، C3 و C4 با گنجاندن کورکومین در رژیم غذایی افزایش یافت. علاوه بر این، نانو کورکومین نسبت به کورکومین آزاد در این شاخص‌ها بهبود بهتری نشان داد. نتایج ارائه شده در اینجا برای IgM، C3، و C4 دو واقعیت را برجسته می کند: دوز پایین کورکومین بهتر است، و فرمول نانو موثرتر است (که قبلا در این بحث توجیه شد). در حمایت، کورکومین پاسخ ایمنی ذاتی ماهی تیلاپیا نیل را با دوز 50 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی القا کرد، اما رشد در سطوح بالاتر مهار شد. مطالعه حاضر نشان داد که سطوح IgM، C3 و C4 با افزایش دما افزایش می‌یابد و تحریک تولید مواد ضدالتهابی برای کاهش آسیب بافت را آشکار می‌کند. این توسط نتایج آنزیم های کبدی سرم (ALT و AST) در مطالعه حاضر پشتیبانی می شود. استرس گرمایی باعث آسیب بافتی و استرس اکسیداتیو در ماهی می شود. بنابراین، منجر به آپوپتوز و مرگ سلولی 83-85 می شود. تنش گرمایی حاد کوتاه مدت منجر به تنظیم بالای C3 و C486 می شود. علاوه بر این، کمبود در سیستم کمپلمان باعث افزایش آسیب عروقی، نفوذپذیری عروق و آنژیوادم 87 شده است.

افزایش تدریجی سطوح IgM پلاسما با افزایش دما (18، 23، 28، 33 درجه) در ماهی تیلاپیا نیل به جز بالاترین دما مشاهده شد. به طور مشابه، پرورش ماهی باس (Dicentrarchus labrax) در دمای بالا (23 درجه) سطح IgM خود را در مقایسه با پرورش ماهی در 17 درجه 88 افزایش داد. در مقابل، مطالعات دیگر نشان داد که HS سطوح IgM، C3 و C4 را در fsh89- کاهش داد. 91. این اختلاف ممکن است با طول مدت تنش گرمایی توجیه شود، جایی که سطوح IgM، C3 و C4 تحت استرس حاد افزایش می‌یابد اما تحت استرس مزمن کاهش می‌یابد. سیم پوزه بلانت (Megalobrama amblycephala Yih) افزایش فعالیت های مکمل جایگزین و سطوح IgM را پس از 6 ساعت قرار گرفتن در معرض استرس گرمایی نشان داد که پس از 12 ساعت 9 کاهش یافت.

در نتیجه، نانو کورکومین نسبت به کورکومین آزاد در بهبود عملکرد رشد، شاخص‌های استرس، ایمنی غیراختصاصی و مقاومت به تنش گرمایی ماهی تیلاپیا نیل برتری دارد. مکمل غذایی نانو کورکومین در سطوح 50 یا 100 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی در بهبود عملکرد و کاهش اثرات منفی استرس گرمایی مؤثر بود، در حالی که دوزهای 100 یا 200 میلی گرم در کیلوگرم در رژیم غذایی عملکرد رشد ماهی تیلاپیا نیل را بهبود بخشید. . بنابراین، دوز 100 میلی گرم در کیلوگرم رژیم غذایی برای عملکرد رشد و توانایی مقاومت در برابر حرارت موثر بود.

در دسترس بودن داده ها

تمام داده های تولید یا تجزیه و تحلیل شده در طول این مطالعه در این مقاله منتشر شده گنجانده شده است.

منابع

1. Wang, M. & Lu, M. Tilapia polyculture: بررسی جهانی. آبزی پروری Res. 47، 2363–2374 (2016).

2. فائو (سازمان خواربار و کشاورزی سازمان ملل متحد). 2020. تولید جهانی آبزی پروری 1950-2020.

3. Bao, JW et al. پاسخ‌های بیوشیمی خون، ترکیب اسیدهای چرب و بیان microRNAها به استرس گرمایی در تیلاپیا پرورش‌یافته اصلاح‌شده ژنتیکی (Oreochromis niloticus). J. ترم. Biol. 73، 91–97 (2018).

4. السید، AFM Tilapia Culture 2nd end, 348 (Elsevier/Academic Press, 2020).

5. Dawood، MAO، Eweedah، NM & Elbialy، ZIA سدیم بوتیرات رژیم غذایی نشانگرهای زیستی استرس خون، پروتئین های شوک حرارتی و پاسخ ایمنی ماهی تیلاپیا نیل (Oreochromis niloticus) را که در معرض استرس گرمایی قرار گرفته بودند، بهبود بخشید. J. ترم. Biol. 88, 102500 (2020).

6. باگات، ام و همکاران. تاثیر استرس گرمایی بر سیستم ایمنی در گاوهای شیری Rev. Res. دامپزشک علمی 126، 94-102 (2019).

7. Chu، GM & Song، YM Growth عملکرد، ویژگی های خونی و پاسخ های ایمنی خوک های پرواربندی در فصول مختلف. آسیایی جی.انیم. دامپزشک Adv. 8 (5)، 691-702 (2013).

8. داس، آر و همکاران. تأثیر استرس گرمایی بر سلامت و عملکرد حیوانات شیری: مروری. دامپزشک جهان. 9، 260-268 (2016).

9. ژانگ، سی.-ن. و همکاران اثرات فروکتولیگوساکارید بر پاسخ ایمنی، قابلیت آنتی اکسیدانی و بیان HSP70 و HSP90 در ماهی خرطومی (Megalobrama amblycephala Yih) تحت تنش گرمایی بالا. آبزی پروری 433، 458-466 (2014).

10. Dominguez، M.، Takemura، A.، Tsuchiya، M.، و Nakamura، S. تاثیر عوامل محیطی مختلف بر سطوح ایمونوگلوبولین در گردش در تیلاپیا نیل، Oreochromis niloticus. Aquaculture 241, 491e500 (2004).

11. Galina, J., Yin, G., Ardo, L. & Jeney, Z. استفاده از گیاهان محرک سیستم ایمنی در ماهی: مروری بر تحقیقات. فیزیول ماهی، بیوشیمی. 35، 669-676 (2009).

12. Vallejos-Vidal، E.، Reyes-López، F.، Teles، M. & MacKenzie، S. Te پاسخ fsh به رژیم های غذایی محرک ایمنی. ایمونول صدف ماهی. 56، 34-69 (2016).

13. لی، WH و همکاران. کورکومین و مشتقات آن: کاربرد آنها در عصب فارماکولوژی و علوم اعصاب در قرن بیست و یکم Curr. نوروفارماکل. 11, 338-378 (2013). 14. Ak, T. خواص آنتی اکسیدانی و مهار رادیکال کورکومین. شیمی. Biol. تعامل داشتن. 174، 27-37 (2008).

15. Aggarwal، BB & Harikumar، KB اثرات درمانی بالقوه کورکومین، عامل ضد التهابی، در برابر بیماری های عصبی، قلبی عروقی، ریوی، متابولیک، خودایمنی و نئوپلاستیک. بین المللی جی بیوشیم. سلول بیول. 41، 40-59 (2009).

16. Yuan, J., Liu, R., Ma, Y., Zhang, Z. & Xie, Z. کورکومین با مهار سیگنال دهی NF-kB و COX-2 در دود سیگار التهاب راه هوایی و تشکیل مجدد راه هوایی را کاهش می دهد. موش COPD القا شده Inflammation 41, 1804-1814 (2018).

17. Yonar, EM, Yonar, SM, İspir, Ü., Ural, M. & Ş.,. اثرات کورکومین بر مقادیر خونی، ایمنی، وضعیت آنتی اکسیدانی و مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در برابر Aeromonas salmonicida subsp. آکروموژنز. ایمونول صدف ماهی. 89، 83–90 (2019).

18. لیا، تی و همکاران. اثرات رژیم غذایی مکمل کورکومین بر رشد و پارامترهای ایمنی غیراختصاصی سیرینوس امریگالا در برابر عفونت ادواردسیلا تاردا. بین المللی J. Curr. میکروبیول. 6، 1230-1243 (2017).

19. Negi, PS, Jayaprakasha, GK, Rao, LJM & Sakariah, KK فعالیت ضد باکتریایی روغن زردچوبه: یک محصول جانبی از تولید کورکومین. جی. آگریک. مواد شیمیایی مواد غذایی 47, 4297-4300 (1999).

20. ماندال، MNA و همکاران. کورکومین از سلول های شبکیه در برابر مرگ سلولی ناشی از نور و استرس اکسیدان محافظت می کند. راد آزاد. Biol. پزشکی 46, 672-679 (2009).

21. Prasad، S.، Gupta، SC، Tyagi، AK & Aggarwal، BB Curcumin، جزء ادویه طلایی: از کنار تخت تا نیمکت و پشت. بیوتکنول. Adv. 32، 1053-1064 (2014).

22. جیانگ، جی و همکاران. اثرات مکمل غذایی کورکومین بر عملکرد رشد، فعالیت آنزیم های گوارشی روده و ظرفیت آنتی اکسیدانی ماهی کپور صلیبی Carassius auratus. آبزی پروری 463، 174-180 (2016).

23. Mahmoud, HK, Al-Sagheer, AA, Reda, FM, Mahgoub, SA & Ayyat, MS مکمل کورکومین رژیمی بر رشد، ایمنی، وضعیت آنتی اکسیدانی و مقاومت به Aeromonas hydrophila در Oreochromis niloticus تأثیر می گذارد. آبزی پروری 475، 16-23 (2017).

24. Umamaheswari, M. & Krishnamurthy, R. اثرات تعدیل کننده ایمنی کورکومین (Curcuma longa) بر روی ماهی خوراکی آب شیرین Catla catla (همیلتون-بوکانان). بین المللی J. Adv. علمی Res. مدیریت 3، 115–118 (2018).

25. García-Pérez, OD et al. اثرات اسید لینولئیک کونژوگه و کورکومین بر عملکرد رشد و آنزیم‌های استرس اکسیداتیو در تغذیه میگو سفید جوان اقیانوس آرام (Litopenaeus vannamei) با آفلاتوکسین. آبزی پروری Res. 51، 1051–1060 (2020).

26. Li, L., Zhang, Z. & Huang, Y. تجزیه و تحلیل رونویسی یکپارچه و کشف مسیرهای سیگنال دهی درگیر در اثرات محافظتی کورکومین در برابر استرس اکسیداتیو در سلولهای کبدی تیلاپیا. آکوات. سموم 224, 105516 (2020).

27. Muller, RH & Keck, CM Challenges and راه حل ها برای تحویل داروهای بیوتکنولوژی – مروری بر فناوری نانو کریستال دارو و نانوذرات لیپیدی. جی بیوتکنول. 113، 151-170 (2004).

28. Mythri, RB, Jagatha, B., Pradhan, N., Andersen, J. & Bharath, MS مهار کمپلکس میتوکندری I در بیماری پارکینسون: چگونه کورکومین می تواند از میتوکندری محافظت کند؟ آنتی اکسیدان سیگنال ردوکس 9, 399-408 (2007).

29. Sahni, JK, Baboota, S. & Ali, J. نقش امیدوارکننده نانوداروها در دارورسانی. فارم. بار. 43، 16-18 (2011).

30. Zou, P., Helson, L., Maitra, A., Stern, ST & McNeil, SE پلیمری فارماکوکینتیک و متابولیسم نانوذرات کورکومین در موشهای صحرای کانول شده. مول. داروسازی 10، 1977–1987 (2013).

31. Jiang, Y., Chekuri, S., Fang, RH & Zhang, L. مهندسی تعاملات بیولوژیکی در مقیاس نانو. Curr. نظر. بیوتکنول. 55، 1-8 (2019).

32. Marchiori، MS et al. کورکومین موجود در رژیم غذایی بلدرچین در شرایط استرس سرما عملکرد و کیفیت تخم مرغ را بهبود می بخشد. انیمیشن. Feed Sci. تکنولوژی 254، 114-192 (2019).

33. Dhivya, R., Rajendran, J. & Rajasekaran, M. نانوکامپوزیت کورکومین/ZnO پاسخگو برای دارورسانی. Adv. ماتر Lett. 6, 505-512 (2015).

34. AOAC (انجمن شیمیدانان رسمی تحلیلی). روشهای رسمی تجزیه و تحلیل AOAC، آرلینگتون، ویرجینیا (1990).

35. گونی، کربوهیدرات DB. در: Tietz NW (ed) مبانی شیمی بالینی. 4th ed.WB Saunders, Philadelphia, pp 351-374 (1996).

36. Rosalki، S. تست بیوشیمیایی عملکرد قشر آدرنال. بین المللی جی. کلین. تمرین کنید. 52، 189-191 (1998).

37. Bergmeyer, HU, Horder, N. & Rej, R. توصیه تایید شده در مورد روش های IFCC برای اندازه گیری غلظت کاتالیزوری آنزیم ها. بخش 2. روش IFCC برای آسپارتات آمینوترانسفراز. جی. کلین. شیمی. کلین. بیوشیمی. 24, 497-510 (1986).

38. ECCLS. تعیین غلظت فعالیت کاتالیزوری در سرم L: آسپارتات آمینوترانسفراز (EC 2.6.1.1، ASAT). کلین. شیمی. میتی. 20, 198-204 (1989).

39. Tiez، NW، ed. راهنمای بالینی آزمایشات آزمایشگاهی، ویرایش سوم. فیلادلفیا: WB Saunders Company 354–357 (1995).

40. Midhun، SJ و همکاران. تعدیل آنزیم‌های گوارشی، ژن‌های GH، IGF-1 و IGF-2 در استخوان استخوانی، Tilapia (Oreochromis mossambicus) توسط کورکومین غذایی. آبزی پروری بین المللی 24، 1277–1286 (2016).

For more information:1950477648nn@gmail.com