In Vivo فعالیت ضد خستگی سوفو با تقویت ایزوفلاون ها

یونشیان لیو*، یون ژو*، ساتورو نیراساوا1، Eizo Tatsumi1، Yongqiang Cheng، Lite Li

پکن آزمایشگاه کلیدی غذای کاربردی از منابع گیاهی، کالج علوم غذایی و مهندسی تغذیه، دانشگاه کشاورزی چین، پکن، روابط عمومی چین، 1 مرکز تحقیقات بین‌المللی ژاپن برای علوم کشاورزی، تسوکوبا، 305‑{2}}، ژاپن

مخاطب:joanna.jia@wecistanche.com/ واتساپ: 008618081934791

چکیده

زمینه:

سوفو یک غذای سنتی تخمیر شده سویا چینی است. ایزوفلاون ها در سویا به وفور یافت می شوند و محصولاتی که با ایزوفلاون ها ترکیب می شوند فواید زیادی برای سلامتی دارند. هدف از این مطالعه بررسیضد خستگیاثر گوگرد غنی شده با ایزوفلاون ها

مواد و روش ها:

در داخل بدنضد خستگیفعالیت سوفو با غنی‌سازی ایزوفلاون‌ها (IF) در این مطالعه از طریق آزمون شنای جامع با استفاده از موش‌های ICR و تعیین پارامترهای بیوشیمیایی مورد بررسی قرار گرفت. عوامل مربوط بهخستگیاز جمله گلیکوژن کبدی، اسید لاکتیک خون (BLA)، نیتروژن اوره خون (BUN) تعیین شد. ترکیب ایزوفلاون در IF sufu نیز برای بررسی فعالیت ضد خستگی ایزوفلاون ها تعیین شد.

نتایج:

در طی تخمیر، گلوکزیدهای ایزوفلاون به آگلیکون تبدیل شدند و هر دو سوفو با و بدون تقویت IF، زمان شنای کامل موش‌های ICR را طولانی‌تر کردند. مصرف سوفو همچنین محتوای گلیکوژن کبدی را افزایش داد، در حالی که سطح اسید لاکتیک خون (BLA) و محتوای نیتروژن اوره خون (BUN) را کاهش داد. یک رابطه دوز-پاسخ در هر دو شنای وامانده ساز و تست کلیرانس BLA مشاهده شد، با تقویت دوز متوسط ​​(1 درصد) IF بالاترین فعالیت را نشان داد.

نتیجه:

IF سوفو می تواند فعالیت ضد خستگی بالایی داشته باشد.

کلمات کلیدی: ضد خستگی، تست شنای وامانده ساز، ایزوفلاون، سوفو

مقدمه

خستگیبه عنوان دشواری در شروع یا حفظ فعالیت های داوطلبانه تعریف می شود که می تواند به دو دسته ذهنی و فیزیکی طبقه بندی شود.خستگی[1] در میان مکانیسم‌های پذیرفته‌شده ناشی از ورزشخستگینظریه انسداد است، [2] که نشان می دهد تجمع بیش از حد اسید لاکتیک خون (BLA) و نیتروژن اوره خون (BUN) منجر به اختلالات فلزی می شود که در نتیجهخستگی. یکی دیگرخستگیمکانیزمی که مورد توجه خاص دانشمندان است «نظریه رادیکال» است. "نظریه رادیکال" کلاسیک هارمن نشان می دهد که ورزش شدید می تواند باعث عدم تعادل بین اکسیداسیون و سیستم ضد اکسیداسیون بدن شود. «پارادوکس اکسیژن» به خوبی مستند شده است زیرا افزایش جذب و مصرف O2 می‌تواند نیاز انرژی ماهیچه‌های اسکلتی را در طول تمرینات بدنی هوازی برآورده کند، در حالی که وقتی ظرفیت مهار مکانیسم‌های دفاعی غیر آنزیمی و آنزیمی تحت تأثیر قرار می‌گیرد، استرس اکسیداتیو را بیشتر می‌کند.[3] آنتی اکسیدان ها که با خنثی کردن رادیکال های آزاد از ترکیبات سلولی در برابر اکسیداسیون محافظت می کنند، می توانند از خستگی ماهیچه های اسکلتی جلوگیری کنند.[4] با این حال، مکانیسم ها روشن نشده است. سوفو یک کشک سویا تخمیر شده سنتی است که منشا آن چین است و برای بیش از 1000 سال بخشی از رژیم غذایی چینی است.

از طریق تخمیر، محتوای بسیاری از مواد مغذی از جمله ویتامین ها و پپتیدهای سویا افزایش می یابد. سوفو نه تنها تغذیه ای بلکه کاربردی نیز در نظر گرفته می شود. گزارش شده است که سوفو دارای فعالیت ضد اکسیداسیون است، آنزیم مبدل آنژیوتانسین I مهارکننده (ACE) و فعالیت ضد جهش زایی در شرایط آزمایشگاهی است. [5-7] با این حال، بیشتر سوفوهای تجاری حاوی 6.2 تا 14.8 درصد نمک هستند و رژیم غذایی سرشار از نمک خطر سلامتی را افزایش می‌دهد، [8] که مصرف سوفو را محدود می‌کند. برخی از تولیدکنندگان سوفو سوفوی کم نمک را روانه بازار کرده اند که میزان نمک آن زیر 6 درصد است. سوفو کم نمکی که ما در این مطالعه تهیه کردیم حاوی حدود 4 درصد نمک بود که برای مصرف نمک در رژیم غذایی تعیین کننده نیست. سویا در ایزوفلاون‌ها فراوان است و محصولاتی که با ایزوفلاون‌ها ترکیب شده‌اند، فواید سلامتی زیادی دارند. ایزوفلاون ها به شکل آگلیکون ها (دیدزین، جنیستئین و گلیسیتین) و مزدوجات گلوکوزیدی مربوطه، که شامل گلوکوزیدها (دیدزین، جنیستین، و گلیسیرین)، مالونیل گلوکوزیدها و استیل گلوکوزیدها هستند، وجود دارند. تخمیر، ایزوفلاون‌های سویا را از گلیکوزیدهای داخل توفو به آگلیکون‌های مربوطه از طریق هیدرولیز توسط -گلیکوزیداز تبدیل می‌کند،[9] که به طور قابل‌توجهی فراهمی زیستی و جذب سوفو را در مقایسه با توفو بهبود می‌بخشد.[10] یک رژیم غذایی معمولی چینی دارای میانگین مصرف روزانه تنها حدود 20 میلی گرم ایزوفلاون است.[11]

با در نظر گرفتن تولید تخمینی سالانه سوفو بیش از 300،{1}} تن متریک در چین، [12] تقویت ایزوفلاون ها در سوفو ممکن است راهی ممکن برای بهبود مصرف ایزوفلاون ها، به ویژه، آگلیکون های مفیدتر باشد. تا به حال، ادبیات کمی در مورد غنی سازی ایزوفلاون ها در غذاهای تخمیر شده سویا وضد خستگیفعالیت سوفو، و همچنین مکانیسم‌های ضد خستگی in vivo ایزوفلاون‌ها. در این مطالعه، ما سوفو کم نمک با محتوای ایزوفلاون بالا تهیه کردیم و اثر ضد خستگی in vivo سوفو غنی شده با ایزوفلاون ها را با آزمایش شنای جامع موش بررسی کردیم. سپس چندین پارامتر بیوشیمیایی مرتبط با خستگی از جمله گلیکوژن کبدی، BLA، BUN تعیین شد. ترکیب ایزوفلاون در سوفو IF نیز برای ارتباط با فعالیت ضد خستگی تعیین شد.

بدنسازی سیستانچ

مواد و روش ها

مواد

سویای تجاری غیر GMO (Zhonghuang 13، تولید شده در 2009) از آکادمی علوم کشاورزی چین (پکن، چین) خریداری شد. عصاره ایزوفلاون از سویا از شرکت دارویی Guanghan Biochem، Ltd. (سیچوان، چین) خریداری شد. این عصاره از 41.2 درصد ایزوفلاون کل شامل 25 درصد دایدزین، 9.7 درصد گلیسیرین، 5.6 درصد جنیستین، 0.7 درصد دایدزین، 0.1 درصد گلیسیتین و 0.1 درصد جنیستین تشکیل شده است.

حیوانات

موش های نر ICR (با وزن 18 تا 20 گرم) از Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Co., Ltd. (پکن، چین) خریداری شدند. آنها در یک اتاق سطح SPF با چرخه تناوب نور-تاریکی 12/12 ساعت در دمای اتاق ثابت 1 ± 23 درجه و رطوبت متوسط ​​(5 ± 55 درصد) قرار گرفتند. موش‌ها به مدت یک هفته قبل از انجام درمان‌های آزمایشی اجازه یافتند تا محیط اطراف را بپذیرند. پس از سازگاری، 50 موش به طور تصادفی به 5 گروه 10 تایی تقسیم شدند. موش‌ها به‌طور مداوم به مدت 15 روز با رژیم غذایی تجاری جوندگان تغذیه شدند و با آب مقطر (گروه W)، سوفو قرمز تجاری Wang Zhihe (گروه C)، 0.5 درصد IF sufu (گروه L)، 1 درصد IF sufu (گروه M) گاواژ شدند. ) و 2 درصد IF sufu (گروه H). دوز تجویز 9.2 گرم بر کیلوگرم توده بدن در روز بود.

تهیه سوفو با تقویت ایزوفلاون ها (IF sufu)

IF sufu was prepared in the Wang Zhihe Corporation (Beijing, China). The preparation followed the method reported by Han, Rombouts, and Nout[12] with some modifications: (1) Tofu preparation. The tofu was prepared by salt precipitation from boiled soymilk. The tofu was then sliced into cubes of 3.1 × 3.1 × 1.8 cm, weighing approximately 10 g per cube (2) Pre‑fermentation. Actinomucor elegans was used as the fermentation starter. The mucor suspension was sprayed onto the surface of tofu and it was allowed to ferment for 72 h at room temperature (28°C, RH >95 درصد ) (3) نمک زدن. مکعب ها به مدت 5 روز در یک شیشه سرامیکی نمک زدند تا اینکه محتوای نمک پهتزه پس از تخمیر به حدود 16 درصد رسید (4). عصاره ایزوفلاون به یک سوپ قرمز تجاری سوفو اضافه شد که عمدتاً شامل برنج کپک قرمز، الکل تقطیر چینی، شکر، نمک، پودر گندم، ادویه است. هر مکعب نمکی به یک بطری شیشه ای (250 میلی لیتر) منتقل شد و سپس به طور کامل با سوپ پس از تخمیر پر شد. تخمیر در دمای اتاق 25 درجه و رطوبت بالای 60 درصد با تهویه ملایم به مدت 75 روز انجام شد. محتوای نمک محصول نهایی در محدوده 4.7 تا 5.1 گرم در 100 گرم بود. نمونه های سوفو برای استفاده بیشتر در آب مقطر با غلظت 20 میلی لیتر بر کیلوگرم حل شدند.

تعیین محتویات ایزوفلاون ها در IF sufu

محتوای ایزوفلاون بر اساس پروتکلی که قبلا توسط کلمپ و همکارانش توضیح داده شد تعیین شد. [13] مکعب های سوفو در خلاء خشک شده و سپس به صورت پودر در آمدند. برای استخراج، پودر نمونه خشک شده در خلاء (3.{4}} گرم) در یک ارلن (25{20}} میلی‌لیتر) با متانول آبی (۸۰ درصد، ۴۰ میلی‌لیتر) وزن شد. فلاسک به مدت 2 ساعت در حمام آب 65 درجه تکان داده شد و سپس تا دمای اتاق (25 درجه) خنک شد. NaOH (3 میلی لیتر، 2 مولار) اضافه شد و فلاسک در دمای اتاق روی یک تکان دهنده اوربیتال به مدت 10 دقیقه تکان داده شد. فلاسک از شیکر خارج شد، سپس 1 میلی لیتر اسید استیک گلاسیال به آن اضافه شد. سوسپانسیون در یک سیلندر مدرج ریخته شد و با متانول آبی (80 درصد) تا 50 میلی لیتر رقیق شد. محلول از طریق کاغذ صافی درجه کمی فیلتر شد، سپس 5 میلی‌لیتر به داخل یک سیلندر مدرج 10 میلی‌لیتری پیپت شد و سپس 4 میلی‌لیتر آب و با متانول به 10 میلی‌لیتر رقیق شد. سیلندر به طور مکرر بسته شده و معکوس شده است. عصاره یک میلی لیتری به یک لوله سانتریفیوژ 1.5 میلی لیتری منتقل شد و برای تجزیه و تحلیل بیشتر در 7000 × گرم به مدت 5 دقیقه سانتریفیوژ شد. یک کروماتوگراف مایع LC-10ATvp (Shimadzu، ژاپن) مجهز به یک ستون سلول کلاهکی Pak C18 (5 میکرومتر، 250 × 4.6 میلی‌متر id، شرکت SHISEIDO، ژاپن) و یک طیف‌سنجی فرابنفش در طول موج 260 نانومتر برای اندازه‌گیری ایزوفلاوون استفاده شد. . عصاره ایزوفلاون در دمای 40 درجه شسته شد. فازهای متحرک برای HPLC شامل حلال (A) آب - متانول - اسید استیک (88 به علاوه 10 به علاوه 2) و (B) متانول - اسید استیک (98 به علاوه 2) بود. گرادیان حلال به شرح زیر بود: غلظت حلال (B) از 10 به 70 درصد در 35 دقیقه افزایش یافت. سرعت جریان 1.2 میلی لیتر در دقیقه بود. داده های کمی برای هر ایزوفلاون با مقایسه با استانداردهای شناخته شده به دست آمد.

بدنسازی سیستانچ

تست کامل شنا

موش‌ها پس از آخرین تغذیه به مدت 3{5}} دقیقه استراحت کردند. سپس سیم حلبی به وزن 5 درصد وزن بدن یک موش به انتهای دم هر موش متصل شد. موش ها در یک مخزن شنا با آب در عمق بیشتر از 30 سانتی متر در 0/1 ± 25 درجه قرار گرفتند. آب هم زده شد تا موش ها تا پایان آزمایش شنا کنند، که به عنوان نقطه زمانی تعریف شد که موش ها نتوانستند در عرض 7 ثانیه به سطح آب بروند تا نفس بکشند. بازه زمانی از شروع شنا تا نقطه پایانی به عنوان زمان شنای کامل ثبت شد.

تعیین گلیکوژن کبدی

موش ها به مدت 8 ساعت قبل از آخرین تغذیه ناشتا بودند. موش ها 30 دقیقه پس از مصرف خوراکی نهایی، با برداشتن کبد، بلافاصله با سالین شسته و با کاغذ صافی خشک شدند. مطابق با دستورالعمل کیت تشخیص گلیکوژن کبدی (لات شماره 20091215، موسسه مهندسی زیستی نانجینگ جیانچنگ، نانجینگ، چین)، نمونه های کبد به طور دقیق وزن شدند و جذب گلیکوژن کبدی تحت OD 620 نانومتر با استفاده از طیف سنج فرابنفش 752 اندازه گیری شد. همکاری ابزار تحلیلی سوم شانگهای، شانگهای، چین).

تعیین اسید لاکتیک خون (BLA)

موش ها در مخزن شنا با دمای آب 30 درجه قرار گرفتند تا به مدت 10 دقیقه بدون بار شنا کنند. نمونه خون موش ها قبل، بلافاصله و 20 دقیقه بعد از شنای اجباری جمع آوری شد. با توجه به دستورالعمل کیت تشخیص اسید لاکتیک کل خون (Lot No. 20091215, Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute, Nanjing, China)، سطح BLA موش ها در OD 530 نانومتر با استفاده از طیف سنجی میکروپلیتی مدل junior (Bio Tek) اندازه گیری شد. Instrument, Inc., USA). ناحیه تحت پوشش منحنی اسید لاکتیک خون به صورت زیر تعریف می شود: ناحیه تحت پوشش منحنی اسید لاکتیک خون=5 × (L1 به علاوه 3 × L2 به علاوه 2 × L3) که در آن L1، L2 و L3 نشان دهنده اسید لاکتیک خون هستند. محتوای تست شده قبل، بلافاصله و 20 دقیقه پس از شنای اجباری.

تعیین نیتروژن اوره خون (BUN)

موش‌ها 30 دقیقه پس از آخرین تجویز خوراکی به‌صورت جداگانه مجبور شدند در یک مخزن شنا حاوی آب در دمای 30 درجه به مدت 90 دقیقه بدون بار شنا کنند. به موش‌ها اجازه داده شد به مدت 60 دقیقه استراحت کنند و سپس کره چشم‌های موش‌ها خارج شد و 0.5 میلی‌لیتر نمونه خون به دنبال روش خونریزی پس‌اوربیتال که توسط تیلور، هیز و توث گزارش شده بود، جمع‌آوری شد.[14] پس از نگهداری در یخچال به مدت 3 ساعت در دمای 4 درجه، نمونه های خون منعقد شده و با سرعت 2000 دور در دقیقه به مدت 15 دقیقه سانتریفیوژ شدند. سرم برای اندازه گیری BUN با استفاده از یک آنالایزر بیوشیمیایی خودکار مدل 7060 (Hitachi, Ltd., Japan) جمع آوری شد.

تحلیل آماری

نتایج به صورت میانگین ± انحراف معیار ارائه شد. تجزیه و تحلیل های آماری با یک آزمون دو طرفه انجام شده توسط نرم افزار SPSS 15 انجام شد.{1}} (SPSS Inc., Chicago, IL, USA). مقادیر احتمال P < 0.05="" (دو="" دنباله)="" از="" نظر="" آماری="" معنی‌دار="" و="" p=""><0.01 بسیار="" معنی‌دار="" در="" نظر="" گرفته="">

نتایج

غلظت ایزوفلاون IF sufu

محتوای و ترکیب ایزوفلاون ها ممکن است مستقیماً بر فعالیت های زیست فعال آنها تأثیر بگذارد. محتوای ایزوفلاون در IF sufu در جدول 1 خلاصه شده است. یین و همکاران. تغییرات گزارش شده در ترکیب ایزوفلاون های سوفو در طی تخمیر بعدی و همچنین پیش تخمیر، هر چند با اثرات جزئی، شناسایی شد.[9] همانطور که در جدول 1 نشان داده شده است، با افزایش غنی سازی ایزوفلاون ها در سوپ پس از تخمیر، غلظت ایزوفلاون ها افزایش یافت. تجمع آگلیکون ها (دیدزین، گلیسیتین و جنیستئین) در گروه L، M و H در مقایسه با گروه کنترل 50/2، 67/3 و 45/4 برابر بود.

اگر سوفو زمان کامل شنا را طولانی کرد

مدل شنای فراگیر نماینده استقامت ورزش عضلانی یک مدل قابل اعتماد است که در مطالعه تست ضد خستگی پذیرفته شده است که تکرارپذیری بالایی می دهد. کاهش حساسیت به خستگی با زمان طولانی‌تر شنا در ارتباط است. همانطور که در شکل 1 نشان داده شده است، هر چهار نمونه سوفو مورد استفاده در رژیم غذایی می توانند به طور قابل توجهی زمان شنای موش ها (**P < 0.01)="" را="" به="" ترتیب="" 58.6="" درصد،="" 64.46="" درصد،="" 80.01="" درصد،="" 70.27="" درصد="" افزایش="" دهند.="" ،="" نشان="" می="" دهد="" که="" سوفو="" دارای="" یک="" فعالیت="" ضد="" خستگی="" است.="" موش="" های="" گروه="" l،="" m،="" و="" h="" طولانی="" تر="" از="" گروه="" c="" شنا="" کردند="" و="" گروه="" m="" به="" طور="" قابل="" توجهی="" نسبت="" به="" گروه="" c="" موثرتر="" است،="" که="" نشان="" می="" دهد="" محتوای="" ایزوفلاون="" ممکن="" است="" در="" اعمال="" فعالیت="" ضد="" خستگی="" حیاتی="" باشد.="" برای="" مطالعه="" مکانیسم="" ضد="" خستگی="" if="" sufu،="" برخی="" از="" پارامترهای="" بیوشیمیایی="" از="" جمله="" گلیکوژن="" کبدی،="" bla،="" bun="" تعیین="">

IF sufu باعث افزایش محتوای گلیکوژن کبدی شد

انرژی برای ورزش در ابتدا از تجزیه گلیکوژن و سپس از گلوکز در گردش آزاد شده توسط کبد به دست می آید.[15] نقش گلیکوژن کبدی مکمل مصرف گلوکز خون و حفظ گلوکز خون در محدوده فیزیولوژیکی است. یک راه موثر برای بهبود استقامت و کاهش خستگی، افزایش میزان ذخیره گلیکوژن قبل از شروع ورزش است.[16] اثر دریافت سوفو IF بر محتوای گلیکوژن کبدی در شکل 2 نشان داده شده است. در مقایسه با گروه W، محتوای گلیکوژن کبدی گروه C، گروه M و گروه H به طور قابل توجهی بالاتر است (*P<0.05), which="" suggests="" sufu="" was="" capable="" of="" increasing="" the="" hepatic="" glycogen="" content,="" thus="" having="" a="" potential="" effect="" on="" retarding="" fatigue.="" in="" contrast="" to="" the="" exhaustive="" swimming="" test,="" the="" sufu="" with="" the="" fortification="" of="" isoflavones="" did="" not="" show="" any="" significant="" difference="" compared="" with="" the="" control="" group,="" indicating="" isoflavones="" are="" not="" the="" key="" factor="" for="" increased="" hepatic="" glycogen="">

IF sufu باعث کاهش محتوای BLA در طول تمرین شد

BLA محصول گلیکولیز کربوهیدرات ها در شرایط بی هوازی است و گلیکولیز منبع اصلی انرژی برای ورزش شدید در مدت زمان کوتاه است. BLA در طول ورزش تجمع می یابد، که مقدار pH خون و بافت عضلانی را کاهش می دهد و بر سیستم گردش خون و عملکرد سیستم عضلانی اسکلتی تأثیر می گذارد. کاهش قدرت انقباضی عضله در نهایت باعث ایجاد خستگی می شود.[17] اگر بتوان از تجمع اسید لاکتیک جلوگیری کرد یا پاکسازی اسید لاکتیک را در حین ورزش تسریع کرد، فعالیت ضد خستگی انجام خواهد شد. محتوای BLA قبل، بلافاصله بعد و 2{4}} دقیقه بعد از تست شنای کامل در جدول 2 نشان داده شده است. ناحیه محاسبه شده تحت پوشش منحنی اسید لاکتیک خون که حذف فعالیت اسید لاکتیک خون نمونه های آزمایش شده را اعلام می کند نیز نشان داده شده است. در جدول 2. سوفو به طور قابل توجهی پاکسازی اسید لاکتیک خون را که در طول ورزش تولید می شد، ترویج کرد. منطقه تحت پوشش منحنی اسید لاکتیک خون IF sufu به طور قابل توجهی کمتر از گروه C بود (#P <0.05)، با="" گروه="" m="" کاهش="" 13.3="" درصدی="" در="" مقایسه="" با="" گروه="" شاهد.="" علاوه="" بر="" این،="" نتیجه="" یک="" اثر="" وابسته="" به="" دوز="" مثبت="" را="" نشان="" می="" دهد،="" یعنی="" افزایش="" دوز="" ایزوفلاون="" ها="" در="" یک="" محدوده="" خاص،="" که="" می="" تواند="" اثر="" پاکسازی="" اسید="" لاکتیک="" خون="" را="" بهبود="">

بدنسازی سیستانچ

IF sufu محتوای BUN را کاهش داد

دیناموفورها در ورزش شامل قند، چربی و پروتئین است. وقتی زمان حرکت از 30 دقیقه تجاوز نمی کند، پروتئین به ندرت در ایجاد انرژی شرکت می کند و محتوای BUN پایدار است. پروتئین ها و اسیدهای آمینه زمانی متابولیسم کاتابولیک قوی تری دارند که بدن نتواند انرژی کافی از طریق متابولیسم کاتابولیک قند و چربی به دست آورد. پس از مدت زمان طولانی حرکت، نیتروژن اوره افزایش می یابد.[2] گزارش شده است که محتوای BUN به طور قابل توجهی با شدت تمرین و زمان استقامت همبستگی مثبت دارد.[18] سوفو به طور قابل توجهی محتوای BUN را در مقایسه با گروه آب کاهش داد (*P < 0.05)="" [شکل="" 3].="" تفاوت="" بین="" گروه="" کنترل="" و="" گروه="" آب="" بسیار="" معنی="" دار="" است="" (**p=""><0.01). با="" این="" حال،="" محتوای="" bun="" در="" گروه‌های="" تیمار="" در="" مقایسه="" با="" گروه="" کنترل="" بیشتر="" است="" و="" تفاوت="" معنی‌داری="" وجود="" ندارد.="" پیشنهاد="" می="" شود="" که="" غنی="" سازی="" ایزوفلاون="" ها="" برای="" کاهش="" محتوای="" bun="" ضروری="" نیست="" و="" حتی="" می="" تواند="" به="" عنوان="" یک="" عامل="" منفی="" عمل="" کند.="" احتمالاً="" سایر="" اجزای="" عملکردی="" مانند="" پپتیدهای="" سویا="" و="" برنج="" قرمز="" تأثیر="" عمده="" ای="" در="" کاهش="" محتوای="" bun="">

بحث

مطالعات اپیدمیولوژیک متعددی نشان می‌دهد که فلاونوئیدهای رژیمی ارتباط نزدیکی با پیشگیری از بیماری‌های دژنراتیو دارند، اما جذب این ترکیبات بسیار کم به نظر می‌رسد و به نظر می‌رسد بسیاری از آنچه جذب می‌شود به سرعت به متابولیت‌های کونژوگه غیرفعال تبدیل می‌شود.[19] آگلیکون‌های ایزوفلاون که الگوی جذب متفاوتی از گلوکزیدها نشان می‌دهند، در معده موش‌های صحرایی مؤثرتر جذب می‌شوند.[20] از نظر تئوری، غنی سازی ایزوفلاون ها در طول رسیدن سوفو می تواند به طور موثری جذب IF را از طریق تبدیل گلوکزیدها به آگلیکون بهبود بخشد. در نمونه سوفو با غنی‌سازی ایزوفلاون‌ها، میزان دایدزین در بین آگلیکون‌ها بیشترین میزان را دارد، در حالی که در نمونه سوفو شاهد، جنیستئین بیشترین میزان را دارد. گاردنر، چاترجی و فرانک اشباع احتمالی فراهمی زیستی جنیستئین را در دوزهای 288 در مقابل 144 میلی گرم کل ایزوفلاون در روز مشاهده کردند.[21] با این حال، قبلاً هیچ مدرکی مبنی بر اشباع فراهمی زیستی دایدزین گزارش نشده است که نشان دهنده پتانسیل افزایش فراهمی زیستی ایزوفلاون ها با افزایش محتوای دایدزین ایزوفلاون ها است. بنابراین، افزودن عصاره ای از ایزوفلاون ها در طول پس از تخمیر، تبدیل از گلوکوزیدها به آگلیکون ها را تسهیل می کند، محتوای آگلیکون های بالاتر در IF sufu را در مقایسه با شاهد افزایش می دهد و می تواند بر اشباع فراهمی زیستی جنیستئین نیز غلبه کند. تست شنای کامل نشان داد که IF sufu زمان شنای کامل را طولانی می کند. اضافه کردن 5 درصد وزن بدن موش‌ها در طول مدت شنا تا خستگی می‌تواند به طور موثری استرس خستگی را شبیه‌سازی کند، در حالی که موش‌ها را از شنا کردن آزاد منع نمی‌کند. دمای آب می تواند به طور قابل توجهی بر رفتار حیوانات تأثیر بگذارد.

بدنسازی سیستانچ

دمای آب 30 درجه مانع از تبادل بین دمای آب و بدن می شود که به حفظ دمای بدن نیز کمک می کند. در دمای آب 25 درجه، پیلوارکشن و افزایش تون عضله پنجه مشاهده شد. این رفتارها برای جلوگیری از اتلاف گرما و در نتیجه حفظ دمای بدن اتخاذ می‌شوند.[22] در آزمایش ما، دمای آب روی 25 درجه تنظیم شده است و آب سرد جریان عصبی سمپاتیک موش ها را افزایش می دهد، [23] که می تواند به عنوان یکی دیگر از عوامل استرس زا در نظر گرفته شود. گزارش شده است که ایزوفلاون های سویا دارای فعالیت های آنتی اکسیدانی در شرایط آزمایشگاهی با استفاده از قدرت آنتی اکسیدانی کاهنده آهن (FRAP) و سنجش رادیکال های آزاد ضد DPPH هستند.[24] داده های ما نشان می دهد که ایزوفلاون ها می توانند با کاهش سهم استرس اکسیداتیو ناشی از ورزش، اثرات مفیدی بر ظرفیت استقامت داشته باشند. یک مطالعه قبلی فعالیت ضد خستگی فلاونوئیدهای حاصل از ابریشم ذرت (FCS) را ارزیابی کرد و نشان داد که FCS قادر است فعالیت ضد خستگی موش ها را افزایش دهد.[25] تخمین زده می شود که ایزوفلاون ها ممکن است برخی ویژگی های بیولوژیکی مانند فعالیت ضد خستگی را با سایر فلاونوئیدها به اشتراک بگذارند. از نتایج تعیین گلیکوژن کبدی، BLA، BUN، ما پیشنهاد می کنیم که فعالیت ضد خستگی سوفو یک اثر جامع و پیچیده است که توسط مواد مختلف از جمله ایزوفلاون ها به آن کمک می شود. مقدار اسیدهای آمینه، به ویژه اسید آلفا آمینو بوتیریک، آلانین، گلیسین، ایزولوسین، سرین، والین، ترئونین و تیروزین در پلاسما در طی آزمایش‌های ورزشی متوالی به سرعت کاهش می‌یابد.[26] در طی تخمیر، پروتئین سویا به پپتیدها و اسیدهای آمینه آزاد که غنی از این 8 اسید آمینه کلیدی هستند، تجزیه می شود.[27] این احتمال وجود دارد که پر کردن اسیدهای آمینه ممکن است به بازگشت به سطح طبیعی کمک کند، که نمی‌توان آن را به تنهایی با ایزوفلاون‌ها انجام داد.

برنج کپک قرمز یک ماده مهم برای سوپ پس از تخمیر است که سطح سوفو را رنگ می کند. وانگ و همکاران دریافتند که این ماده همچنین تأثیر مثبتی بر ضد خستگی دارد، که زمان شنا را برای موش‌ها افزایش می‌دهد، به طور موثر کاهش گلوکز در خون را به تاخیر می‌اندازد و از افزایش غلظت لاکتات و BUN جلوگیری می‌کند.[28] برنج کپک قرمز در نمونه‌های سوفو در آزمایش‌های ما ممکن است به افزایش گلیکوژن کبدی به جای ایزوفلاون‌ها کمک کند. مطابق با نتیجه گیری قبلی توسط شن و همکاران، ایزوفلاون ها نقش مهمی در کاهش سطح BLA دارند.[29] IF sufu قادر به مهار تجمع اسید لاکتیک و تسریع پاکسازی اسید لاکتیک با افزایش محتوای ایزوفلاون کل، به ویژه آگلیکون های زیستی و قابل جذب است.

نتیجه گیری

مطالعه ما اولین مطالعه‌ای است که فعالیت ضد خستگی سوفو و IF سوفو را در داخل بدن گزارش می‌کند و روش جدیدی را برای افزایش محتوای ایزوفلاون آگلیکون‌های موجود در سوفو، که زیست‌موجودتر و جذب‌پذیرتر هستند، توسعه داده است. پیشنهاد می شود که سوفو دارای فعالیت ضد خستگی بالایی است. زمان شنا به طور قابل توجهی طولانی شد، ذخیره گلیکوژن به طور قابل توجهی افزایش یافت، و محتوای BLA و BUN به طور قابل توجهی کاهش یافت. نشان داده شده است که اثر ایزوفلاون ها بر ضد خستگی وابسته به دوز است. IF sufu با دوز متوسط ​​(1 درصد) غنی سازی ایزوفلاون ها بیشترین فعالیت را در بین سه سطح ایزوفلاون افزوده نشان می دهد (0.5 درصد، 1 درصد، 2 درصد)، که به طور قابل توجهی زمان شنای موش ها را طولانی می کند و تسریع می کند. پاکسازی BLA در طول تمرین نسبت به سوفو تجاری. با این حال، IF sufu در تجمع گلیکوژن و حذف BUN بسیار موثر نیست. کاوش مکانیسم اساسی در سطوح سلولی یا مولکولی نیاز به مطالعه بیشتری دارد تا توضیح دهد چرا این پارامترهای بیوشیمیایی با توضیح اثر ضد خستگی مطابقت ندارند و چگونه هر شکل ایزوفلاون مزایای ضد خستگی را ارائه می دهد. مطالعات بیشتری برای ارزیابی فعالیت ضد خستگی سوفو بر روی انسان مورد نیاز است.

این محصول ما برای ضد خستگی است! برای اطلاعات بیشتر روی عکس کلیک کنید!

منابع

1. Chaudhuri A, Behan PO. خستگی در اختلالات عصبی. Lancet 2004؛ 363: 978-88.

2. Wang L، Zhang HL، Lu R، Zhou YJ، Ma R، Lv JQ، و همکاران. دکاپپتید CMS001 استقامت شنا را در موش ها افزایش می دهد. پپتیدها 2008؛ 29: 1176-82.

3. Ikeuchi M, Koyama T, Takahashi J, Yazawa K. اثرات مکمل آستاگزانتین بر خستگی ناشی از ورزش در موش. Biol Pharm Bull 2006؛ 29:2106-10.

4. Yu F، Lu S، Yu F، Feng S، Mcguire PM، Li R، و همکاران. اثرات محافظتی پلی ساکارید از Euphorbiakansui (Euphorbiaceae) بر استرس اکسیداتیو ناشی از ورزش شنا در موش. Can J Physiol Pharmacol 2006;84:1071-9.

5. Wang LJ، Saito M، Tatsumi E، Li LT. فعالیت های مهاری آنزیم تبدیل کننده آنژیوتانسین I و آنتی اکسیدانی عصاره های سوفو (توفوی تخمیری). Japan Agric Res 2003؛ 37:129-32.

6. Ma YL، Cheng YQ، Yin LJ، Wang JH، Li LT. اثرات فرآوری و NaCl بر فعالیت مهاری آنزیم مبدل آنژیوتانسین I و محتوای اسید آمینوبوتیریک در طول تولید سوفو. Food Bioprocess Technol 2013;6:1782-9.

7. Moy YS، Lai YJ، Chou CC. اثرات فرآیند رسیدن بر جهش زایی و ضد جهش زایی سوفو، یک محصول تخمیری سنتی چینی سویا. Food Bioprocess Technol 2012;5:2972-7.

8. Han BZ، Beumer RR، Rombouts FM، Nout MJ. ایمنی میکروبیولوژیکی و کیفیت سوفو-یک غذای تخمیر شده سویای چینی تجاری کنترل غذا 2001؛ 12:541-7.

9. Yin LJ، Li LT، Li ZG، Tatsumi E، Saito M. تغییرات در محتویات ایزوفلاون و ترکیب سوفو (توفو تخمیر شده) در طول تولید. Food Chem 2004؛ 87: 587-92.

10. IzumiT، Piskola MK، Osawa، Obata، TobeK، Saito M، و همکاران. آگلیکون ایزوفلاون سویا سریعتر و در مقادیر بالاتر از گلوکزیدهای آنها در انسان جذب می شود. J Nutr 2000؛ 130: 1695-9.

11. Ho SC، Chan SG، Yi Q، Wong E، Leung PC. مصرف سویا و حفظ حداکثر توده استخوانی در زنان چینی هنگ کنگ. J Bone Miner Res 2001; 16:1363-9.

12. Han BZ، Beumer RR، Rombouts FM، Nout MJ. یک غذای تخمیر شده سویا چینی. Int J Food Microbiol 2001;65:1-10.

13. Klump SP، Allred MC، MacDonald JL، Ballam JM. تعیین ایزوفلاون ها در سویا و غذاهای منتخب حاوی سویا با استخراج، صابون سازی و کروماتوگرافی مایع: مطالعه مشارکتی. J AOAC Int 2001;84:1865-83.

14. Taylor R، Hayes KE، Toth LA. ارزیابی یک رژیم بیهوشی برای جمع آوری خون رترو-اوربیتال از موش. J Am Assoc Lab Anim Sci 2000;39:14-7.

15. کامپیوتر هلمن، کاتان ام بی. فلاونوئیدهای رژیمی: مصرف، اثرات سلامتی و فراهمی زیستی. Food Chem Toxicol 1999؛ 37:937-42.

16. Piskola MK، Yamakoshi J، Iwai Y. Daidzein و جنیستئین، اما گلوکوزیدهای آنها از معده موش جذب نمی شود. FEBS Lett 1999؛ 447: 287-91.

17. جیا جی ام، وو سی اف. فعالیت ضد خستگی عصاره کشت بافت گیاه سوسسوریه فارم بیول 2008؛ 46:433-6.

18. شما LJ، Zhao M، Regenstein JM، Ren JY. فعالیت آنتی اکسیدانی in vitro و اثر ضد خستگی in vivo پپتیدهای لوچ (Misgurnus anguillicaudatus) تهیه شده توسط هضم پاپائین. Food Chem 2011; 124:188-94.

19. Suh SH، Paik IY، Jacobs K. تنظیم هموستاز گلوکز خون در طول ورزش طولانی مدت. Mol Cells 2007؛ 23:272-9.

20. Bo Y، Zhang XL، Xiao MB، Feng XL، Xian QH. فعالیت پاکسازی و ضد خستگی پپتیدهای تخمیر شده سویا بدون چربی Eur Food Res Technol 2008; 226:415-21.

21. CD Gardner، Chatterjee LM، Franke AA. اثرات مکمل های ایزوفلاون در مقابل غذاهای سویا بر غلظت خونی جنیستئین و دایدزین در بزرگسالان. J Nutr Biochem 2009؛ 20: 227-34.

22. Calil CM, Marcondes FK. مقایسه زمان بی حرکتی در مدل های تجربی شنای موش صحرایی. Life Sci 2006;79:1712-9.

23. Kirov SA، Talan MI، Engel BT. خروج سمپاتیک به بافت چربی قهوه ای بین کتفی در موش های سازگار با سرما Physiol Behav 1996؛ 59: 231-5.

24. لی سی‌چ، یانگ ال، زو جی‌زی، یونگ سی، هوانگ یی، چن زی. فعالیت آنتی اکسیدانی نسبی ایزوفلاون های سویا و گلیکوزیدهای آن Food Chem 2005;90:735-41.

25. Hu QL، Zhang LJ، Li YN، Ding YJ، Li FL. تصفیه و فعالیت ضد خستگی فلاونوئیدها از ابریشم ذرت. Int J Phys Sci 2010;5:321-6.

26. Bazzarre TL، Murdoch SD، Wu SM، Herr DG، Snider IP. پاسخ اسید آمینه پلاسما ورزشکاران آموزش دیده به دو آزمایش خستگی پی در پی با و بدون تغذیه کربوهیدرات موقت. J Am Coll Nutr 1992؛ 11:501-11.

27. Han BZ، Rombouts FM، Nout MJ. پروفایل اسید آمینه سوفو، یک غذای تخمیر شده سویای چینی. J Food Compost Anal 2004؛ 17:689-98.

28. وانگ جی جی، شیه ام جی، کو SL، لی سی‌ال، پان پی‌ام. تأثیر کپک قرمز برنج بر ضد خستگی و تغییرات مرتبط با ورزش در پراکسیداسیون لیپیدی در تمرینات استقامتی. Appl Microbiol Biotechnol 2006;70:247-53.

29. Shen XY، Wang JB، Long Z، Yan SF، Xiao Y، Li Y. اثر تسکین دهنده ترکیب ایزوفلاون سویا بر خستگی فیزیکی در موش. Chin J Food Hyg 2004;3:215-7.